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De quel spécimen de chenille s'agit-il ?

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Tôt ce matin, j'ai trouvé ce magnifique spécimen de chenille rampant sur une feuille :

Ce spécimen a été trouvé aujourd'hui matin (saison de printemps) au Brésil à Porto Alegre City 30°01'59"S 51°13'48"W. Avec environ 1 pouce de long.

Quel genre de spécimen est-ce?


Cela semble être un "Limace singe" chenille (Phobétron spp) de la famille des Limacodidae (ou limaces).

Selon ces sites (ici et ici), les chenilles de ce type sont communément appelées en portugais « Lagarta-Aranha » (ou « lesma-macaco ») [littéralement, « chenille d'araignée » et « limace de singe » en anglais).

Le plus commun Phobétron l'espèce que je peux trouver au Brésil est Phobétron hipparchie.

  • La chenille de cette espèce semble être assez variable (allant du brun au rouge) comme le montrent ici, ici et ici

Phobétron hipparchie (Source : http://caterpillars.unr.edu/)


Papillon 1 : Observer le cycle de vie d'un papillon

Observer et identifier les caractéristiques du cycle de vie d'un papillon.

Le contexte

Cette leçon est la première de deux leçons qui se concentrent sur les papillons et leurs habitats.

Dans Papillon 1 : Observation du cycle de vie d'un papillon, les élèves observent un organisme au fil du temps et comparent son développement précoce (chenille) à son développement ultérieur (papillon). Une compétence d'observation fondamentale en science consiste à comparer et à contraster. Les élèves compareront également les caractéristiques réelles d'un papillon avec une représentation fictive d'un papillon.

À travers une série d'activités, les élèves étudieront le cycle de vie d'un papillon tout en notant son développement au fur et à mesure qu'il se métamorphose de chenille en papillon. Pendant ce temps, les élèves apprendront les attributs d'un papillon à la fois par l'observation et la comparaison et le contraste.

Dans cette leçon, les élèves tiendront un « journal papillon » d'observations et d'activités. Selon le niveau de compétence individuel, les élèves peuvent utiliser des mots, des images ou des illustrations pour enregistrer leurs observations. L'American Museum of Natural History propose un exemple de page de journal de terrain en ligne spécialement conçu pour l'observation des papillons qui peut être imprimé et relié à la fin de cette leçon.

Dans Butterfly 2: A Butterfly's Home, les élèves conçoivent leurs propres jardins de papillons pour démontrer quelles caractéristiques environnementales constituent un habitat favorable aux papillons. Vous avez la possibilité de planter un « jardin de papillons » créé par les élèves, ce qui permet aux élèves d'interagir avec les papillons dans leur environnement naturel.

Planifier à l'avance

Avant de commencer cette leçon, vous devrez être préparé avec un « Kit papillon » qui peut être acheté auprès d'une variété d'entreprises, y compris le Kit d'activités papillon The Earth’s Birthday. Vos choix pour un kit peuvent varier en fonction des besoins de votre classe, mais l'activité suivante peut être utilisée avec n'importe quel kit ou arrangement de classe, allant d'un papillon pour la classe à observer à un papillon pour chaque élève. Assurez-vous que votre kit commence par des « œufs » et non par des chenilles, des chrysalides ou des papillons.

Vous aurez besoin d'un exemplaire du livre La chenille affamée par Eric Carle.

Temps: Environ 30 minutes avec 30 jours d'observation

Motivation

Montrez aux enfants le diaporama Science NetLinks intitulé Que se passe-t-il ici ? Ce diaporama en ligne décrit le cycle de vie d'un papillon. Ce livret est destiné à susciter la discussion. Il peut être revu à la fin de la leçon pour voir comment les réponses des élèves ont changé.

Développement

Pour commencer la leçon, dites aux élèves qu'ils apprendront comment le papillon change tout au long de sa vie.

Commencez la leçon en disant aux élèves : "Décrivons une chenille." Utilisez l'image de la chenille de la feuille de l'enseignant Cycle de vie d'un papillon pour stimuler la conversation. Cette activité peut être réalisée avec toute la classe sous forme de séance de remue-méninges pendant laquelle vous enregistrez les réponses sur un grand tableau pendant que les élèves notent les réponses sur leurs feuilles individuelles. Ou, les élèves peuvent travailler en petits groupes et proposer des idées qu'ils ajoutent à un tableau de groupe et partagent avec la classe. Vous pouvez accepter toutes les réponses. Plus tard, les élèves reviendront aux réponses sur le tableau et développeront des critères pour déterminer lesquels des énoncés représentent des faits qu'ils ont observés au cours de leurs propres observations du cycle de vie d'un papillon.

Cycle de vie d'un papillon
Lire La chenille affamée à la classe. Dès que l'histoire est terminée, revoyez le livre et demandez aux enfants de réfléchir à la façon dont la chenille change dans l'histoire.

Expliquez que les papillons passent par un processus de croissance au cours duquel leur apparence change radicalement. Demandez-leur d'énumérer (ou de dessiner) sur leur feuille d'élève Cycle de vie d'un papillon les façons dont la « chenille très affamée » a changé au cours de l'histoire. Encouragez-les à utiliser ces termes :

Dites aux élèves qu'ils observeront de première main le développement d'un papillon. En suivant les instructions incluses dans le kit papillon, les élèves feront des observations quotidiennes du développement des papillons dans leur « journal de terrain », en accordant une attention particulière aux papillons :

Encore une fois, les observations peuvent consister en des mots, des images ou des illustrations.

Évaluation

Reliez les pages du journal des élèves dans un « revues ». Les élèves peuvent créer des couvertures « en forme de papillon » en prenant du papier de construction de 11 x 17 pouces, en le pliant et en coupant le contour d'une aile de papillon. Ils peuvent ensuite ajouter des taches de peinture sur l'une des ailes, puis replier l'autre aile pour que la peinture soit symétrique des deux côtés. Les pages reliées du journal peuvent ensuite être insérées "dans" le papillon. (Remarque pour l'enseignant : vous souhaiterez peut-être attendre d'avoir terminé les leçons connexes, y compris La maison d'un papillon, avant de relier les livres.)

Dessinez un diagramme du cycle de vie du papillon. Les activités alternatives basées sur le style d'apprentissage d'un élève sont :

  • Mettre en scène le cycle de vie d'un papillon
  • Placez les cartes de cycle de vie dans l'ordre en utilisant Butterfly Life Cycle du site Web Earth's Birthday Project
  • Créez une chanson sur le cycle de vie d'un papillon sur un air familier

Rallonges

Pour une leçon de suivi sur les papillons et comment ils s'adaptent à leur environnement, allez à la leçon Science NetLinks intitulée Butterfly 2: A Butterfly's Home.

Le kit d'activités papillon anniversaire de la Terre fait partie du programme papillon anniversaire de la Terre, un événement annuel établi. Chaque printemps, des salles de classe à travers le pays organisent une fête d'anniversaire pour la Terre, culminant avec la libération de papillons - des papillons que les élèves élèvent de chenilles directement dans leurs propres salles de classe. Sur le site Web, vous pouvez télécharger un guide d'activités de 48 pages qui contient une multitude d'idées intéressantes. De plus, vous pouvez commander les chenilles du projet Earth's Birthday, qui sont livrées chaque année, de mars à juillet.

Vous pouvez choisir de poursuivre avec l'activité d'extension Magic School Bus : Circle of Life. Dans cette activité, les élèves comparent leur propre développement d'un bébé à celui d'un papillon.

Pour les étudiants anglophones d'ESL, le Magic School Bus propose également une activité appelée A Butterfly Grows Up dans laquelle les étudiants créent des mini-livres sur le cycle de vie du papillon.


Leçon de science des papillons

Le cycle de vie d'un papillon

Un papillon est un insecte. Il a trois parties principales du corps : une tête, un thorax et un abdomen.

Il a également six pattes, deux yeux composés et deux paires d'ailes.

Avant qu'un papillon ne devienne un papillon, il s'agit d'une chenille, qui est aussi un insecte, même si elle est très différente d'un papillon et n'a pas d'ailes.

L'incroyable transformation qu'une chenille subit pour devenir un papillon s'appelle métamorphose.

(Avez-vous lu sur la métamorphose d'une coccinelle dans un autre article ?)

Un papillon passe par quatre étapes dans sa vie. Les étapes sont appelées un cycle de vie et sont expliquées ci-dessous.

Lorsqu'une femelle papillon devient adulte, elle pond un œuf – ou peut-être une grappe de plusieurs œufs – sur une feuille de sa plante préférée.

Un œuf de papillon est très petit et un peu collant, il collera donc à la feuille jusqu'à l'éclosion.

Environ 4 à 10 jours après la ponte de l'œuf, une minuscule chenille en éclora !

Tout ce que la petite chenille voudra faire, c'est manger. Il commencera à manger les feuilles de la plante sur laquelle il a éclos presque dès qu'il sera sorti de son œuf.

Beaucoup de chenilles mangent également la coquille de l'œuf dont elles ont éclos.

La petite chenille s'appelle un larveet mangera beaucoup pour se préparer à l'étonnante transformation qu'il subira au cours de la prochaine étape de sa vie.

Au fur et à mesure qu'il mange, il deviendra trop gros pour sa peau et perdra sa couche supérieure de peau pour révéler une toute nouvelle couche de peau plus grande en dessous !

Cela se produira environ quatre ou cinq fois au cours du stade larvaire. Parce qu'une chenille est un insecte, elle a trois paires de vraies pattes sur la partie avant de son corps (le thorax), plus beaucoup d'autres pattes appelées faux jambesqu'il utilise pour grimper et s'accrocher aux choses.

La chenille continuera à manger et à grandir pendant plusieurs semaines jusqu'à ce qu'il soit temps de passer à l'étape suivante.

Après un certain temps, la chenille cessera de manger. Il est maintenant beaucoup plus gros qu'il ne l'était lorsqu'il a éclos pour la première fois de son œuf et il est prêt à devenir une nymphe au stade suivant.

La chenille commence à chercher l'endroit idéal pour se transformer en pupeou chrysalide.

Il cherche un endroit qui se sent en sécurité, puis s'attache solidement, généralement à l'envers, à l'endroit (comme une tige de plante ou le côté d'une feuille ou un objet solide) à l'aide de brins de soie. Puis il jette sa peau une dernière fois.

Cette fois, la nouvelle peau en dessous n'est pas douce et flexible, elle est dure et lisse et fait un étui autour du corps de la chenille.

La chrysalide est suspendue sur place pendant plusieurs jours, semaines ou même mois, selon le type de pupe de papillon dont il s'agit. Alors que le papillon est au stade de nymphe, des changements incroyables se produisent à l'intérieur de la chrysalide et il sera bien différent quand il sortira enfin !

Bientôt, la nymphe aura fini de se développer et un papillon sortira de la chrysalide.

Il est passé d'une longue chenille qui rampe et utilise des mâchoires pour manger des feuilles à un papillon délicat qui peut voler à l'aide de ses ailes colorées et mange en suçant le nectar des fleurs.

Lorsqu'un papillon sort pour la première fois de sa chrysalide, ses ailes sont repliées et légèrement humides.

Il y restera pendant un certain temps et pompera le sang dans les veines de ses ailes et permettra à l'air de les sécher. Ensuite, il s'envolera et cherchera sa première gorgée de nectar et commencera sa recherche d'un partenaire. Une femelle papillon pondra des œufs et le cycle de vie recommencera à zéro.

Les ailes de papillon sont généralement très colorées avec de jolis motifs sur le dessus de leurs ailes tandis que le dessous de leurs ailes est généralement de couleurs plus sombres et plus ternes.

Les papillons se reposent généralement les ailes fermées et les couleurs sombres les aident à se fondre dans leur environnement, ce qui rend plus difficile pour les oiseaux et autres prédateurs de les voir.

Les couleurs à la surface des ailes d'un papillon sont constituées de nombreuses petites écailles minuscules.

Si vous deviez toucher les ailes d'un papillon, vous remarqueriez une substance colorée ressemblant à de la poudre sur vos doigts.

Ce sont les petites écailles ! Un papillon mange à travers son trompe (dites : PRO-BO-SIS), qui ressemble beaucoup à une paille que vous utiliseriez pour boire une boisson, sauf qu'elle est reliée au papillon à la place d'une bouche.

Les papillons femelles sont généralement plus gros que les mâles et vivent généralement un peu plus longtemps que les mâles.

  • Photos d'un papillon machaon noir sortant de sa chrysalide.
  • Cycle de vie fascinant d'un papillon de la larve à l'adulte avec un jardin de papillons.

Sens du papillon

Les papillons ne voient, n'entendent, ne sentent, ne goûtent et ne sentent pas comme nous. Même s'ils peuvent faire toutes ces choses, leurs sens sont très différents des sens humains et pourraient ne pas être tout à fait ce à quoi vous vous attendriez !

Les papillons ont de grands yeux composés, tout comme la plupart des autres insectes. Les yeux composés ont plusieurs lentilles au lieu d'une seule comme nos yeux et ils permettent aux insectes de voir dans de nombreuses directions différentes à la fois, ce qui les aide à savoir quand il y a des prédateurs ou d'autres dangers autour. Leurs yeux composés font partie de la raison pour laquelle les papillons s'envolent souvent si rapidement lorsque vous commencez à vous en approcher.

Entendre « Les papillons n'ont pas d'oreilles, ils ne peuvent donc pas entendre les sons comme nous. Cependant, leurs ailes sont très sensibles et ils peuvent ressentir les vibrations (mouvements de va-et-vient très rapides) que produisent différents sons. Puisqu'ils ressentent le son au lieu de l'entendre, ils ne peuvent vraiment "entendre" que des sons forts ou de grands changements dans la quantité de son autour d'eux.

Les papillons peuvent sentir très bien, mais ils n'ont pas de nez ! Ils peuvent sentir à travers leurs pieds et leurs antennes.

Dégustation – Ils peuvent aussi goûter par les pieds ! Ils ont des parties spéciales sur leurs pieds qui les aident à ressentir le goût de quelque chose pour les aider à décider si c'est quelque chose qui est bon à manger ou non. Ils peuvent aussi goûter à travers leurs antennes.

Sentiment – Comme ils ont six pieds, ils ont beaucoup de choses à ressentir. Les papillons, comme tous les insectes, ont deux antennes, qui les aident aussi à se sentir. Ils ont aussi beaucoup de petits poils sur leur corps qui les aident à ressentir les mouvements.

Papillons contre mites

Les papillons et les mites ont une apparence et un comportement assez similaires, mais voici quelques différences importantes qui vous aideront à les distinguer :

  • Les papillons ont des antennes fines avec des “clubs” aux extrémités et les mites ont des antennes duveteuses ou plumeuses, généralement sans “clubs.”
  • Les papillons ont généralement un corps plus court, plus gros et plus poilu que les papillons.
  • Les mites sont nocturne, ce qui signifie qu'ils sont plus actifs la nuit et dorment pendant la journée. Les papillons sont plus actifs pendant la journée.
  • Parce que les papillons sont nocturnes, leurs ailes ont généralement des couleurs plus foncées que la plupart des ailes de papillon.
  • Les papillons se reposent avec leurs ailes repliées et pointant vers le haut au-dessus de leur corps et les papillons de nuit se posent avec eux ouverts ou bien vers le bas couvrant leur corps.
  • Les papillons fabriquent des chrysalides au stade de la nymphe et les mites fabriquent des cocons.

Mots scientifiques

(Remarque : le pluriel signifie plus d'un)

Trompe– le tube en forme de paille que les papillons utilisent pour boire du nectar et d'autres liquides.

Symétrique– avoir deux côtés qui se ressemblent exactement.

Métamorphose– une transformation que de nombreux insectes et animaux subissent avant d'atteindre le stade adulte. Les changements qui se produisent sont très dramatiques.

Larve(pluriel = larves) – une étape intermédiaire du cycle de vie d'un insecte. Chez un papillon, la larve est une chenille.

Prolegs– pattes sur la partie terminale (l'abdomen) des larves (chenilles).

Pupe(pluriel = pupes) – une étape ultérieure du cycle de vie d'un insecte. Les changements complexes qui se produisent avant que l'insecte ne devienne adulte se produisent à ce stade. Chez un papillon, la nymphe est une chrysalide.

Chrysalide(pluriel = chrysalides) – le revêtement extérieur protecteur d'une chrysalide de papillon.

Nocturne– actif la nuit et endormi pendant la journée.

Feuille de travail imprimable et PDF

Utilisez cette feuille de travail pour aider les enfants à revoir la symétrie.

Discutez de la façon dont les papillons et les mites présentent une symétrie ou Observer la symétrie activité.


Entrez dans le laboratoire - Présentation

Les Manduca Une expérience de croissance peut être utilisée pour découvrir l'impact de la température sur la taille et le taux de croissance d'un organisme. Il existe trois options pour utiliser l'expérience, le laboratoire virtuel rapide, le laboratoire virtuel complet et développer le vôtre Manduca à une température chaude et fraîche. Dans les fenêtres de visualisation quotidiennes, il y a un outil de mesure* qui peut être utilisé pour enregistrer la croissance de chaque Manduca. Chaque fenêtre comprend également la masse de chaque chenille.

Quick Virtual Lab : cet outil peut être utilisé comme un moyen de collecter rapidement des données sur un Manduca cultivés dans chacun des deux réglages de température différents et explorer l'effet de la température sur la croissance et la taille chez des animaux individuels.

Laboratoire virtuel complet : cet outil peut être utilisé comme une alternative à la croissance et à la mesure en direct Manduca dans la classe. Vous pouvez mesurer la masse et la longueur de plusieurs chenilles à partir des deux réglages de température, générer des graphiques des données, effectuer une analyse statistique pour déterminer la signification de vos résultats et explorer les raisons des changements dus à la température.

Laboratoire à faire soi-même : cet outil peut être utilisé comme une expérience à long terme pouvant durer jusqu'à 35 jours. Vous pouvez explorer l'impact de la température sur la taille et le taux de croissance en augmentant le vôtre Manduca de l'œuf à la mite émergente. Vous pouvez tout faire dans le laboratoire virtuel, mais sur votre propre chenille en direct ! Comparez vos résultats à ceux de vos camarades de classe et amis qui les ont cultivés dans l'autre température.

Pour les enseignants (télécharger le PDF) : voici un lien vers le dossier de ressources des enseignants, contenant des instructions complètes pour chaque expérience, des documents pour les élèves, un exemple de plan de cours et des informations de base pour vous aider à démarrer.

* La mesure a été testée et fonctionne dans tous les navigateurs sauf Internet Explorer.

Cette section de Ask A Biologist a été financée par le NSF Grant Award numéro 0746352. Crédits


CAT Sample Papers 2021: Téléchargez des exemples de sujets et de slot Wise et des tests simulés

Dans l'article, nous avons fourni l'exemple de papier CAT par sujet et par créneaux des sessions 2020, 2019, 2018. La notation négative dans les questions de type objectif peut être évitée en pratiquant les exemples de papiers CAT fournis ci-dessous. xA0De plus, il est nécessaire de garder une trace du temps consommé lors de la résolution d'exemples de papiers CAT car cela préparera les candidats à résoudre le papier réel dans le délai imparti. 

Documents de questions CAT 2019 avec solutions

Examen‌ ‌ Question‌ ‌Papier‌ ‌ Réponse‌ ‌Key‌ ‌
CAT‌ �‌ ‌-‌ ‌Quant‌ ‌(Fente‌ 𠃁)‌ ‌ Télécharger‌ ‌ Télécharger‌ ‌
CAT‌ �‌ ‌-‌ ‌Quant‌ ‌(Fente‌ 𠃂)‌ ‌ Télécharger‌ ‌ Télécharger‌ ‌
�T‌ �‌ ‌-‌ 𠃍ILR‌ ‌(Fente‌ 𠃁)‌ ‌ Télécharger‌ ‌ Télécharger‌ ‌
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CAT‌ �‌ ‌-‌ ‌VARC‌ ‌(Fente‌ 𠃁)‌ ‌ Télécharger‌ ‌ Télécharger‌ ‌
CAT‌ �‌ ‌-‌ ‌VARC‌ ‌(Fente‌ 𠃂)‌ ‌ Télécharger‌ ‌ Télécharger‌ ‌

Échantillon de papier CAT & FAQ

Question : Quel est le moyen d'obtenir le test simulé gratuit pour CAT ?

Réponse : Les aspirants candidats au CAT peuvent télécharger les sujets et les exemples de documents à partir des liens fournis ci-dessous dans l'article. De plus, le CAT menant l'IIM publiera également le test officiel CAT Mock sur son site Web quelques semaines avant la date de l'examen. 

Ques: Quelle est la bonne façon d'apparaître pour le test CAT Mock ?

Réponse : Lorsque les candidats se présenteront au test officiel CAT Mock, une seule section apparaîtra sur leur écran. Après avoir essayé cette section particulière, ils peuvent passer à la section suivante alors qu'ils peuvent télécharger les documents de questions CAT des années précédentes selon leur choix de sections à partir des liens fournis dans l'article ci-dessous.

Question : Quand dois-je commencer à passer le test CAT Mock ?

Réponse : Résoudre les tests simulés CAT et les questions posées nécessite du temps et il ne faut passer les tests simulés que s'il a terminé. Préparation CAT. Selon les candidats, le bon moment pour passer des tests simulés CAT est 3 mois avant la date de l'examen. 

Question : Puis-je utiliser une calculatrice tout en résolvant le document de questions CAT ?

Réponse : Non. Il n'est pas conseillé d'utiliser la calculatrice lors de la résolution d'un questionnaire CAT car aucune calculatrice virtuelle ou manuelle n'est autorisée à l'intérieur du centre d'examen. 

Téléchargez les documents de questions de l'année précédente CAT à partir des liens ci-dessous :

*L'article peut contenir des informations sur les années académiques précédentes, qui seront bientôt mises à jour sous réserve de la notification émise par l'université/le collège.


MATÉRIAUX ET MÉTHODES

Collecte et élevage d'insectes

Larves du sphinx sphinx Nessus, Amphion floridensis Clark 1920, ont été élevés à partir d'œufs pondus par des femelles capturées dans la nature et capturées aux rayons ultraviolets en Floride, aux États-Unis, entre mai et juin 2012-2015. Les larves ont été élevées sur des boutures de vigne vierge (Parthenocissus quinquefolia) ou raisin sauvage (Vitis spp.). Toutes les expériences ont été réalisées sur le dernier (4e) stade larvaire. Au total, 60 larves ont été utilisées dans différentes expériences.

Mise en place de l'enregistrement son et vidéo

Pour évaluer les relations entre l'attaque, la production sonore et d'autres comportements défensifs, les chenilles ont été filmées lors d'essais d'attaque simulée. Une chenille a été placée sur une branche de plante hôte contenue dans un flacon rempli d'eau et laissée au repos pendant 15 à 30 minutes avant l'expérience. Les attaques ont été menées en serrant l'extrémité postérieure de la chenille à l'aide de pinces émoussées, simulant l'attaque d'un prédateur (Cornell et al., 1987 Bura et al., 2011). Des attaques séquentielles ont été appliquées à des intervalles de 5 s ou jusqu'à ce que la chenille cesse de signaler. Les essais ont été filmés à l'aide d'une Handycam HDR-HC7 haute définition (Sony, Tokyo, Japon) équipée d'un microphone Sony ECM-MS957 ou d'un détecteur de chauves-souris (type D240x Pettersson, Uppsala, Suède). Les vidéos ont été analysées à l'aide d'iMovie 7.1.4 (Apple, San Bernardino, CA, USA).

Une modification de la configuration décrite ci-dessus a été utilisée pour enregistrer les sons pour l'analyse des caractéristiques sonores. Comme les chenilles se débattaient souvent lorsqu'elles étaient attaquées, il était nécessaire de maintenir le spécimen en place pour contrôler la distance et l'orientation par rapport au microphone. La chenille reposait sur son brin de plante hôte comme décrit ci-dessus, et sa capsule céphalique était tenue entre les doigts d'un expérimentateur pour positionner la bouche à des distances spécifiques du microphone. Les attaques ont été simulées comme décrit ci-dessus. Les sons ont été enregistrés à l'aide d'un microphone in [type 4939 Bruel & Kjaer (B&K), Naerum, Danemark], amplifiés avec un amplificateur de conditionnement B&K Nexus (type 2690) et enregistrés sur un FR-2 Field Memory Recorder (Fostex, Gardena, CA , USA) à une fréquence d'échantillonnage de 192 kHz. Tous les enregistrements ont été réalisés dans une chambre acoustique (Eckel Industries Ltd, Cambridge, MA, USA).

Analyse des caractéristiques sonores

Des fichiers sonores ont été analysés pour évaluer les relations entre les caractéristiques d'attaque et de train sonore, ainsi que les caractéristiques temporelles, spectrales et d'amplitude des unités sonores. Un train est défini comme la séquence de toutes les unités sonores suite à une seule attaque. Nous définissons une unité comme un son ininterrompu tel que perçu par l'oreille humaine, comme d'autres ont utilisé le « chirp » (Broughton, 1976), qui peut être formé d'une ou plusieurs impulsions. Une impulsion est une forme d'onde transitoire avec une composante de montée et de descente distincte. Les analyses ont été réalisées à l'aide d'Avisoft-SASLab Pro (Avisoft Bioacoustics, Berlin, Allemagne) ou Raven Pro 1.4 (Cornell Laboratory of Ornithology, Ithaca, NY, USA).

Pour évaluer les caractéristiques temporelles des trains sonores en réponse à une attaque, nous avons mesuré la latence, la durée et le cycle de service. La latence était l'intervalle entre le contact de la pince avec la chenille et le début de la première unité sonore. La durée du train était l'intervalle entre le début de la première unité et la fin de la dernière unité. Le cycle de service, défini comme la proportion du train occupée par le son, était la somme de toutes les durées d'unité de son dans un train divisée par la durée du train.

Les unités sonores ont été analysées pour des caractéristiques temporelles, spectrales et d'amplitude spécifiques. Les caractéristiques temporelles comprenaient la durée unitaire, le nombre d'impulsions par unité et la fréquence des impulsions. Les durées ont été mesurées à partir de toutes les unités sonores après les deux premières attaques consécutives pour 15 individus. Il est apparu que les unités différaient catégoriquement en fonction de la durée. Pour le vérifier, nous avons effectué une analyse de régression (voir « Analyses statistiques », ci-dessous). À la suite de cette analyse, deux grappes de durées unitaires se sont produites et ont été caractérisées comme étant longues ou courtes (voir Résultats). Des mesures ultérieures des caractéristiques temporelles du son ont été effectuées sur des unités longues et courtes en échantillonnant au hasard cinq unités longues, puis toutes les unités courtes qui suivaient l'unité longue de 15 individus. Les durées unitaires longues et courtes et le nombre d'impulsions ont été mesurés à l'aide d'Avisoft-SASLab Pro Pulse Train Analysis, et les taux d'impulsions ont été calculés en divisant le nombre d'impulsions par la durée unitaire. Les unités composées d'impulsions simples n'ont pas été prises en compte pour le calcul de la fréquence des impulsions. Les caractéristiques spectrales analysées comprenaient la fréquence dominante et les bandes passantes à -6 et -12 dB du pic. Cinq unités longues sélectionnées au hasard et la première unité courte suivant cette unité longue ont été sélectionnées parmi chacun des 15 individus. Les spectres de puissance et les spectrogrammes ont été produits à l'aide d'une transformée de Fourier rapide à 1024 points (fenêtre de Hann, chevauchement de 50 %) dans Avissoft-SASLab Pro. Dans le domaine de l'amplitude, nous avons mesuré les amplitudes relatives des unités longues et courtes et les enveloppes d'amplitude. Nous avons échantillonné au hasard cinq unités longues et toutes les unités courtes qui suivaient l'unité longue. Les amplitudes relatives ont été obtenues en mesurant l'amplitude crête à zéro maximale de chaque unité, ainsi que l'amplitude crête à zéro de toutes les impulsions de chaque unité. Nous avons utilisé toutes les amplitudes d'impulsion pour décrire l'enveloppe des unités longues et courtes (voir « Analyses statistiques », ci-dessous). Pour cette description d'enveloppe, un total de cinq unités longues et toutes les unités courtes suivantes ont été échantillonnées à partir de 10 animaux.

Localiser la source sonore

Pour étudier quelles parties du corps sont impliquées dans la production sonore, nous avons d'abord filmé des chenilles entières sur leur plante hôte pendant qu'elles émettaient des sons. Nous avons ensuite focalisé la caméra sur des régions spécifiques du corps, y compris les stigmates, la région prothoracique antérieure et les pièces buccales, à l'aide d'un équipement vidéo et audio précédemment décrit.

Pour affiner l'emplacement de l'émission sonore, nous avons comparé les amplitudes sonores relatives le long du corps de la bouche à l'anus. Les chenilles ont été positionnées horizontalement sur une tige de leur plante hôte avec les feuilles enlevées afin que les microphones puissent être positionnés à des emplacements et à des distances définis de la chenille. La production sonore était évoquée par une attaque de pincement comme décrit ci-dessus, mais si la chenille se débattait, l'essai était abandonné. Deux microphones miniatures à condensateur (Cold Gold Audio, Nanaimo, BC, Canada) ont été positionnés sur des supports dans trois configurations différentes : 1 cm de la bouche et 1 cm de l'anus 1 cm de la bouche et 1 cm du milieu de l'animal ( côté latéral entre les stigmates 4 et 5) et à 0,5 cm de la bouche et à 0,5 cm du premier stigmate. Les microphones étaient connectés à un ordinateur portable et les sons étaient enregistrés sur Raven Pro 1.4. Pour s'assurer que les deux microphones étaient également sensibles, nous avons généré un clic à des distances égales entre les deux microphones et comparé les amplitudes crête à crête. Les positions des microphones ont été alternées après chaque enregistrement afin que chaque chenille soit enregistrée deux fois avec chaque configuration. Nous avons mesuré les amplitudes de pic et les amplitudes de la moyenne quadratique (RMS) de l'unité la plus longue produite pour chaque enregistrement dans cinq chenilles.

Morphologie

L'anatomie interne a été examinée pour identifier toutes les structures qui pourraient potentiellement être impliquées dans la production sonore, y compris les sacs aériens accessoires, les lobes ou les membranes. Cinq larves du 4e stade conservées dans de l'éthanol à 80 % ont été disséquées pour exposer des parties du tube digestif et de la musculature associée. Les structures anatomiques ont été identifiées après Eaton (1988) et Snodgrass (1935). Les échantillons ont été photographiés à l'aide d'un stéréomicroscope (M205C Leica Microsystems, Wetzlar, Allemagne) équipé d'un appareil photo Leica DMC4500. Les longueurs et les diamètres du jabot, de l'œsophage, du pharynx et de la cavité buccale ont été mesurés à l'aide de Leica Application Suite LAS X v.4.8.

Analyses statistiques

Localisation de la source sonore

Les amplitudes relatives des sons mesurés à différentes positions le long du corps de la chenille ont été testées à l'aide d'analyses de variance (ANOVA) suivies des tests HSD de Tukey (https://CRAN.R-project.org/package=agricolae) exécutés dans le logiciel R v.3.3 .2 (https://www.R-project.org/).

Son et attaque

Les différences dans les caractéristiques temporelles des trains sonores après les première et deuxième attaques ont été évaluées à l'aide d'une paire de Student's t-test avec =0,05. Pour déterminer si les unités sonores consécutives suivant la première attaque différaient dans leurs durées, nous avons utilisé l'ANOVA suivie des tests HSD de Tukey exécutés dans R.

Caractéristiques sonores

Pour déterminer si les unités sonores pouvaient être classées comme longues et courtes, nous avons tracé les durées de toutes les unités après deux attaques consécutives sur un histogramme de fréquence et avons prédit une distribution bimodale. Une analyse de régression linéaire a été exécutée sur les données de l'histogramme, en considérant la durée supérieure d'une case mesurée en secondes comme variable indépendante et la fréquence comme dépendante. Comme la durée était définie comme l'intervalle entre la première et la dernière impulsion d'une unité, les unités à impulsion unique ont reçu une durée de 0 ms et incluses dans la première case. L'équation la mieux ajustée, basée sur R 2 , F-valeur et tous les paramètres significatifs pour α = 0,05, a été sélectionné à l'aide de Table Curve 2D v5.01 (Systat Software Inc., San Jose, CA, USA). La courbe d'équation a été tracée sur l'histogramme pour vérifier qu'elle correspondait à la distribution des bacs.

La corrélation entre le nombre d'impulsions et la durée unitaire a été examinée en traçant cinq unités longues sélectionnées au hasard et les quatre unités consécutives qui les suivaient, indépendamment de leur durée, à partir de 15 chenilles.

Les formes des enveloppes ont été caractérisées par la normalisation des amplitudes et des temps d'impulsion. Chaque amplitude crête à zéro d'impulsion a été divisée par l'amplitude maximale de son unité. De même, chaque temps d'impulsion a été divisé par la durée totale unitaire. De cette façon, l'impulsion la plus élevée de chaque unité avait une amplitude normalisée de 1,0 et les première et dernière impulsions se sont vu attribuer des temps normalisés de 0,0 et 1,0, respectivement. Les unités avec une ou deux impulsions ont été exclues de l'analyse de l'enveloppe. Les enveloppes des unités longues et courtes ont été évaluées séparément en exécutant deux analyses de régression dans la courbe de table 2D v5.01, en considérant le temps normalisé comme variable indépendante et l'amplitude normalisée comme dépendante. L'équation la mieux ajustée a été sélectionnée en utilisant les mêmes critères que ceux décrits ci-dessus.

Les différences entre les unités courtes et longues ont été testées à l'aide de la méthode de Student. t-tests avec des échantillons appariés pour les caractéristiques spectrales, et deux échantillons indépendants pour les caractéristiques d'amplitude et temporelles, en utilisant α=0,05.

Méthodes de simulation numérique pour mécanisme de production de sons

Des modèles numériques ont été construits pour tester les hypothèses de production sonore en utilisant les mesures de l'intestin antérieur de la chenille. La simulation numérique a été réalisée à l'aide de scripts MATLAB personnalisés (R2016a, MathWorks, Natick, MA, USA disponibles auprès de l'auteur correspondant sur demande). Les sons enregistrés par les chenilles ont été analysés à l'aide de la boîte à outils de traitement du signal de MATLAB et comparés aux sons simulés en utilisant les fréquences et les amplitudes de chaque modèle proposé par rapport aux données mesurées.


5. Lutte antiparasitaire

La prévention et le contrôle des puces de chat ont fait l'objet de nombreuses revues et commentaires [3,4,6,8,9,10,11,207,208,209,210]. Il y a eu un certain nombre d'examens des nouveaux ingrédients actifs et produits utilisés pour contrôler C. felis depuis 1997 [3.145.146.210.211.212.213.214.215.216.217.218]. Pfister et Armstrong proposent une revue et une comparaison du fluralaner systémique et de la perméthrine cutanée contre les puces et les tiques [219]. Woodward fournit une revue des insecticides dans les produits vétérinaires qui se concentre sur leur toxicologie [220].

Les tests avec des ingrédients actifs disponibles sur le marché en 1997 se poursuivent et de nombreux nouveaux ingrédients actifs ont été enregistrés. De plus, des produits composés de plusieurs ingrédients actifs ont également été enregistrés. Au cours des 20 dernières années, de nombreux nouveaux principes actifs sont également apparus. Une norme de performance et d'efficacité globale à la fin de la période établie par l'Agence européenne des médicaments est de 95 % de destruction des puces [221] et aux États-Unis, l'EPA accepte 90 % de destruction comme norme. Le besoin de normes plus universelles dans le monde a été abordé par Bobey [138]. Sur la base des dénombrements dans les groupes témoins et traités, la vitesse de destruction se produit lorsqu'au moins 95 % des puces sont tuées à la fois dans les groupes témoins et traités. Ces normes sont conformes aux lignes directrices de l'Association mondiale pour l'avancement de la parasitologie vétérinaire seront prises en compte lors de la présentation de la revue suivante des études d'efficacité [222,223]. Des contrôles positifs (un produit de référence standard) sont recommandés pour valider les traitements sur animaux et ainsi de nombreuses études rapportent des données d'efficacité comparatives avec d'autres produits existants au moment de l'étude. Les facteurs qui peuvent contribuer à la variation apparente des données de laboratoire comprennent la souche de puce du chat testée, les substrats traités, les périodes d'exposition et la durée des tests. La prudence est recommandée lors de l'examen et de la comparaison des études suivantes.

Les études en laboratoire et sur le terrain avec des ingrédients actifs tels que le fipronil, l'imidaclopride, le lufénuron, le méthoprène, la perméthrine et le pyriproxyfène enregistrés avant 1997 se sont poursuivies. Des changements dans les formulations, la technologie d'application, la combinaison avec d'autres ingrédients actifs et les produits génériques ont été signalés pour de nombreux ingrédients actifs plus anciens. Par exemple, une formulation de perméthrine spot-on contenant de l'éther monométhylique de propylène glycol a tué 93 % des puces chez les chiens du jour 3 au jour 28, alors que la formulation originale enregistrée contenant de l'éther monométhylique de diéthylène glycol n'a fourni que 48 % au jour 28. [224]. Dans une autre étude, les deux formulations ont permis de tuer 95 % des puces adultes pendant au moins 28 jours [225]. Les chats traités avec une formulation expérimentale de formulation spot-on de fipronil contenant du diméthylsulfoxyde ont permis de tuer 95 % jusqu'à 5 semaines [226] et des tests similaires ont été menés sur des chiens [227].

Shampooing Deltaméthrine fourni 100% efficacité adulte C. felis à 24 h et 㺕 % de protection pendant au moins 17 jours [228]. Le shampooing à la deltaméthrine sur les chiens a empêché 98 % d'alimentation des puces pendant au moins 3 jours, mais au jour 14, la protection contre l'alimentation était tombée à 30,1 % [229].

Les pulvérisations contenant 0,29 % de fipronil appliquées aux chats ont permis une réduction de 99 % avec une souche de laboratoire sensible de puces de chat, mais n'ont permis d'éliminer que 77,3 % des adultes et 87,3 % de réduction des œufs au jour 30 lorsqu'elles ont été testées contre un isolat collecté sur le terrain [230]. Des applications topiques de fipronil/méthoprène, d'imidaclopride/perméthrine ou d'imidaclopride à des chiens ont tué 96, 48 et 74 %, respectivement, au jour 28 lorsque les puces ont été comptées à 24 h [231]. Les applications topiques de fipronil/méthoprène aux chats ont permis de tuer 95 % pendant 28 jours lorsqu'elles ont été comptées à 24 h. La production d'œufs a été réduite de 77� % pendant 42 jours, et aucun des œufs collectés ne s'est développé pendant au moins 56 jours [232]. Une formulation générique de fipronil a fourni jusqu'à 8 semaines d'efficacité contre C. felis sur les chiens [233] et jusqu'à 6 semaines sur les chats [234]. Une autre formulation générique de fipronil/méthoprène appliquée à des chiens infestés a tué 38 % des puces au jour 3. La mortalité a augmenté à 95 % au jour 21 et à 100 % au jour 28 [235]. Un traitement topique de 10 % de fipronil sur des chiens a permis de tuer à 95 % pendant 35 jours lorsqu'ils ont été confrontés à 100 ou 300 puces non nourries. Au jour 42, l'efficacité a diminué à environ 68 % dans les deux épreuves [236]. Une combinaison spot-on de fipronil/méthoprène sur des chiens a tué 95% des puces adultes pendant 5 semaines. La combinaison fipronil/méthoprène a fourni 90 % d'activité ovicide et 91 % d'inhibition de l'émergence des adultes pendant 8 semaines et les auteurs proposent que la combinaison puisse être synergique contre les stades immatures des puces [237].

L'imidaclopride appliqué aux chats et aux chiens a tué 95 % des puces adultes pendant au moins 3 semaines lorsque les puces étaient comptées à 24 h et à 95 % pendant au moins 4 semaines lorsqu'elles étaient comptées à 48 h [238,239]. Le synergiste pipéronyl butoxyde a augmenté de manière significative l'activité de l'imidaclopride technique contre les puces adultes à 26 ଌ, mais avec des effets mixtes à 20, 30 et 35 ଌ [239]. Richman et al. ont suggéré qu'une interférence avec plusieurs mécanismes de détoxification pouvait survenir, augmentant l'activité de l'imidaclopride [240]. L'association imidaclopride/moxidectine a permis de contrôler à 98 % les puces adultes pendant au moins 28 jours [241]. L'imidaclopride/moxidectine a permis de réduire considérablement le nombre de puces adultes et a empêché la transmission de B. henselae aux chats [242]. Dans une étude comparative de produits commerciaux, l'application topique d'imidaclopride sur des chiens a permis de tuer 95 % des puces sur les chiens pendant au moins 37 jours. Le diazinon, la perméthrine et le fipronil ont tué 95 % pendant au moins 2 jours [243]. Dans des environnements domestiques simulés, des applications ponctuelles d'imidaclopride et de fipronil ont permis un contrôle presque complet des puces. Le lufénuron a nécessité un traitement supplémentaire et une élimination mécanique des puces adultes pour obtenir le contrôle [244].

Une application topique de perméthrine/pyriproxyfène sur des chiens a tué 90 % à 100 % des puces jusqu'à 3 semaines et un effet ovicide à 100 % pendant 49 jours [245]. Les pulvérisations de perméthrine/pyriproxyfène appliquées sur les chiens ont réduit à 90 % les puces en moins de 15 minutes et ont empêché plus de 94 % d'entre elles de se nourrir jusqu'à 2 semaines. Les sprays contenant du fipronil et de l'imidaclopride ont fourni une activité knockdown et anti-feeding significativement moindre par rapport aux sprays de perméthrine 4 h après le traitement [246]. Sprays contenant synergisé -allethrin/pyriproxyfen appliqué aux chats dans des environnements domestiques simulés a entraîné une réduction progressive des puces adultes sur les chats et une réduction de 100 % des œufs, des larves et des adultes en 41, 19 et 23 jours, respectivement [247].

L'association d'IGR et d'adulticides ou l'utilisation d'IGR seuls continue d'être intéressante [124]. Les IGR affectent les œufs, les larves et les puces adultes et il a été démontré que la combinaison avec des adulticides appliqués aux chats et aux chiens empêche l'éclosion des œufs de puces du chat et le développement des larves dans l'environnement. De plus, les IGR semblent réduire le temps nécessaire pour lutter contre les puces à l'intérieur et peuvent également réduire la probabilité qu'une résistance aux insecticides se développe [3].

Le lufénuron mélangé au sang à 1 ppm et administré à des puces adultes à travers une membrane a empêché 98 % des œufs de puces d'éclore. La formation anormale du procuticule des larves traitées au lufénuron a entraîné leur mort à l'éclosion [248]. Une formulation injectable de lufénuron chez le chat a fourni un contrôle de 95 % à la semaine 9 et cela s'est poursuivi à des réductions de 90 % pendant 26 semaines dans des environnements domestiques simulés [249]. De même, des formulations injectables de 10 et 20 mg/kg de lufénuron chez le chat ont entraîné une réduction de 90 % des œufs se développant en adultes pendant 196 jours [250]. Dans une étude clinique, des chiens et des chats ont reçu une dose mensuelle de lufénuron pendant 3 ans. Aucun des animaux traités n'était infesté de puces à la fin de l'étude. Tous les foyers et animaux des témoins étaient infestés de puces à la fin de l'étude [251]. Une étude de terrain d'un an à Cairns, en Australie, a révélé que le nitenpyram et le lufénuron permettaient de réduire de 90 % à 100 % les puces sur les animaux domestiques et dans la maison. Les résultats avec l'imidaclopride étaient variables avec une réduction initiale de 84 % au cours des 16 premières semaines qui a chuté à 18 %, puis est revenue à 70 % 0201384 % pour le reste de l'étude [252].

La formation du chorion de la puce a été décrite en détail fournissant un contexte pour examiner les effets des IGR [253]. Le lufénuron a perturbé la formation d'endocuticules chez les larves et provoqué la dégénérescence des cellules épidermiques [254]. Le sang contenant 2𠄴 ppm de lufénuron administré à des puces adultes a entraîné une mortalité de 18�% au jour 10 [255]. Le lufénuron a causé la dégénérescence des cellules épidermiques et l'inhibition de la différenciation des cellules épithéliales de l'intestin moyen.

Le sang contenant du pyriproxyfène administré à des puces adultes à travers une membrane était relativement non toxique pour elles. Cependant, les œufs n'étaient pas viables et n'ont pas éclos [256]. De même, 100 % des œufs collectés sur des chats traités au pyriproxyfène après traitement n'ont pas éclos. Une excellente activité résiduelle a persisté pendant au moins 60 jours [257]. Dans un grand essai sur le terrain, 107 chats infestés de puces ont été traités avec une formulation spot-on de pyriproxyfène et 99 chats ont reçu du lufénuron une fois par mois. Au jour 30, 49 % des chats traités au pyriproxyfène étaient exempts de puces et ce pourcentage est passé à 88 % au jour 180. Parmi les chats recevant du lufénuron, 30 % et 71 % d'entre eux étaient exempts de puces au jour 30 et 180, respectivement [ 258]. L'exposition des œufs et des larves aux cheveux traités avec 0,01 μg/kg d'IA a complètement inhibé le développement. Lorsque des puces adultes ont été exposées au pyriproxyfène pendant 3 jours, les œufs collectés pendant les 14 jours suivants ne se sont pas développés. L'exposition pendant seulement 2 h a fourni une inhibition de 100 % [259].

Des études sur l'exposition aux tapis et les milieux larvaires ont montré que les résidus de pyriproxyfène étaient plus actifs que le méthoprène ou l'hydroprène [260]. Le méthoprène associé à la perméthrine a augmenté la mortalité des pupes dans certains tapis [261]. Toutes les étapes étaient tolérantes aux résidus des IGR, méthoprène et pyriproxyfène, sur le verre. Lorsqu'elles étaient exposées à des surfaces traitées, les larves étaient incapables de se pupifier. Les nymphes de Pharate se sont transformées en nymphes, mais n'ont pas pu s'éclore. Les pupes et les adultes n'ont pas été affectés [262]. Le DL50 de méthoprène et de pyriproxyfène appliqués au tapis après un vieillissement de 12 mois était de 0,2𠄱.0 et 0,04𠄰.2 mg/m 2 , respectivement [263].

Les débris collectés sur des chats traités à l'imidaclopride ont tué 95 % des larves pendant au moins 61 jours après le traitement [239]. Les couvertures en contact avec des chats traités à l'imidaclopride ont empêché 100 % et 74 % des larves de se développer en adultes pendant 1 et 4 semaines, respectivement [264,265].

Samples of hair from dogs and cats treated with pyriproxyfen were analyzed for pyriproxyfen. Initial samples contained 0.2 to 4.16 mg/kg on dogs and cats, respectively. At 8 weeks the levels still exceeded 0.02 to 0.21 mg/kg on dogs and cats, respectively. Only 0.0001 mg/kg pyriproxyfen is necessary to provide excellent control of flea larvae [266]. Flea eggs collected from cats treated with topical pyriproxyfen failed to hatch for up to 7 weeks. Flea larvae in contact with blankets from cages with treated cats failed to develop into adult fleas and the residual activity persisted for at least 2 weeks [267]. Eggs collected from dogs treated monthly with lufenuron-milbemycin failed to hatch for the day test period [268].

Pyriproxyfen synergized methoprene with as little as 0.06 ppm treated larval media prevented adult emergence by 50% [269]. Other IGRs including chlorfluazuron, cyromazine, dicyclanil, and precocene were active against C. felis larvae with chlorfluazuron and dicyclanil being more active than methoprene or pyriproxyfen [270]. When eggs and larvae of C. felis exposed to filter papers treated with pyriproxyfen, adult emergence was inhibited at 0.1 μg/m 2 [271]. CGA-255� mimicked the effect of JH, especially at rates 𾄀 ppb, but this compound appears not to have been developed against cat fleas [272].

When pupae were treated with methoprene or pyriproxyfen, there was a significant increase in adult mortality within 48 h [273]. Adult mortality was 45.8% with methoprene, 48.4% with pyriproxyfen and only 1.3 to 4.3% in controls. No effect was observed on the fecundity of surviving fleas. IGRs have multiple effects on immature and adult fleas increasing the efficacy of combination treatments.

5.1. New Active Ingredients

New active ingredients and combination treatments continue to be investigated and registered as on-animal and oral therapies even though there are a number of excellent products already in the marketplace. Their development appears to be driven by marketing issues such as convenience, safety, cost, and the need for treatments that control a variety of arthropod pests. However, increased convenience for the consumer can lead to over-use and drug resistance [142]. In an effort to broaden the biological activity of products, numerous combinations of insecticides have been tested and registered in the past 2 decades [210]. Four basic types of efficacy studies are typically reported in the literature: (a) laboratory in vitro (b) on-animal studies in the laboratory (c) on-animal studies in simulated home environments and (d) clinical field studies. Table 2 provides a summary of tests conducted with new active ingredients and combination products registered for cat flea control since 1997.

Tableau 2

New active ingredients and combinations tested and registered against C. felis in in vitro and in vivo tests.


Spécimen

instance, case, illustration, example, sample, specimen mean something that exhibits distinguishing characteristics in its category. instance applies to any individual person, act, or thing that may be offered to illustrate or explain. un instance of history repeating itself case is used to direct attention to a real or assumed occurrence or situation that is to be considered, studied, or dealt with. une Cas of mistaken identity illustration applies to an instance offered as a means of clarifying or illuminating a general statement. a telling illustration of Murphy's Law example applies to a typical, representative, or illustrative instance or case. un typique Exemple of bureaucratic waste sample implies a part or unit taken at random from a larger whole and so presumed to be typical of its qualities. show us a échantillon of your work specimen applies to any example or sample whether representative or merely existent and available. one of the finest specimens of the jeweler's art


Microscopie électronique

La résolution théorique maximale des images créées par les microscopes optiques est finalement limitée par les longueurs d'onde de la lumière visible. Most light microscopes can only magnify 1000⨯, and a few can magnify up to 1500⨯, but this does not begin to approach the magnifying power of an electron microscope (EM), which uses short-wavelength electron beams rather than light to increase magnification and resolution.

Les électrons, comme le rayonnement électromagnétique, peuvent se comporter comme des ondes, mais avec des longueurs d'onde de 0,005 nm, ils peuvent produire une bien meilleure résolution que la lumière visible. An EM can produce a sharp image that is magnified up to 100,000⨯. Thus, EMs can resolve subcellular structures as well as some molecular structures (e.g., single strands of DNA) however, electron microscopy cannot be used on living material because of the methods needed to prepare the specimens.

There are two basic types of EM: the transmission electron microscope (TEM) and the scanning electron microscope (SEM)(Figure (PageIndex<10>)). Le MET est quelque peu analogue au microscope optique à fond clair en termes de fonctionnement. Cependant, il utilise un faisceau d'électrons au-dessus de l'échantillon qui est focalisé à l'aide d'une lentille magnétique (plutôt qu'une lentille en verre) et projeté à travers l'échantillon sur un détecteur. Electrons pass through the specimen, and then the detector captures the image (Figure (PageIndex<11>)).

Figure (PageIndex<10>): (a) A transmission electron microscope (TEM). (b) A scanning electron microscope (SEM). (credit a: modification of work by &ldquoDeshi&rdquo/Wikimedia Commons credit b: modification of work by &ldquoZEISS Microscopy&rdquo/Flickr) Figure (PageIndex<11>): Electron microscopes use magnets to focus electron beams similarly to the way that light microscopes use lenses to focus light.

For electrons to pass through the specimen in a TEM, the specimen must be extremely thin (20&ndash100 nm thick). L'image est produite en raison de l'opacité variable dans diverses parties de l'échantillon. Cette opacité peut être améliorée en colorant l'échantillon avec des matériaux tels que des métaux lourds, qui sont denses aux électrons. La MET exige que le faisceau et l'échantillon soient sous vide et que l'échantillon soit très mince et déshydraté. Les étapes spécifiques nécessaires à la préparation d'un échantillon pour observation sous EM sont discutées en détail dans la section suivante.

Les SEM forment des images de surfaces d'échantillons, généralement à partir d'électrons qui sont éjectés des échantillons par un faisceau d'électrons. This can create highly detailed images with a three-dimensional appearance that are displayed on a monitor (Figure (PageIndex<12>)). En règle générale, les spécimens sont séchés et préparés avec des fixateurs qui réduisent les artefacts, tels que le flétrissement, qui peuvent être produits par séchage, avant d'être recouverts par pulvérisation d'une fine couche de métal tel que l'or. Whereas transmission electron microscopy requires very thin sections and allows one to see internal structures such as organelles and the interior of membranes, scanning electron microscopy can be used to view the surfaces of larger objects (such as a pollen grain) as well as the surfaces of very small samples (Figure (PageIndex<13>)). Some EMs can magnify an image up to 2,000,000⨯.1

Figure (PageIndex<12>): These schematic illustrations compare the components of transmission electron microscopes and scanning electron microscopes. Figure (PageIndex<13>): (a) This TEM image of cells in a biofilm shows well-defined internal structures of the cells because of varying levels of opacity in the specimen. (b) This color-enhanced SEM image of the bacterium Staphylococcus aureus illustrates the ability of scanning electron microscopy to render three-dimensional images of the surface structure of cells. (credit a: modification of work by American Society for Microbiology credit b: modification of work by Centers for Disease Control and Prevention)

  1. Quels sont les avantages et les inconvénients de la microscopie électronique, par opposition à la microscopie optique, pour l'examen d'échantillons microbiologiques ?
  2. Quels types d'échantillons sont mieux examinés à l'aide de la MET ? SEM ?

Utiliser la microscopie pour étudier les biofilms

Un biofilm est une communauté complexe d'une ou plusieurs espèces de micro-organismes, formant généralement un revêtement visqueux attaché à une surface en raison de la production d'une substance extrapolymère (EPS) qui se fixe à une surface ou à l'interface entre les surfaces (par exemple, entre l'air et de l'eau). In nature, biofilms are abundant and frequently occupy complex niches within ecosystems (Figure (PageIndex<14>)). En médecine, les biofilms peuvent recouvrir les dispositifs médicaux et exister dans le corps. Parce qu'ils possèdent des caractéristiques uniques, telles qu'une résistance accrue contre le système immunitaire et aux médicaments antimicrobiens, les biofilms intéressent particulièrement les microbiologistes et les cliniciens.

Because biofilms are thick, they cannot be observed very well using light microscopy slicing a biofilm to create a thinner specimen might kill or disturb the microbial community. La microscopie confocale fournit des images plus claires des biofilms car elle peut se concentrer sur un plan z à la fois et produire une image tridimensionnelle d'un échantillon épais. Les colorants fluorescents peuvent être utiles pour identifier les cellules dans la matrice. De plus, des techniques telles que l'immunofluorescence et l'hybridation in situ par fluorescence (FISH), dans lesquelles des sondes fluorescentes sont utilisées pour se lier à l'ADN, peuvent être utilisées.

La microscopie électronique peut être utilisée pour observer les biofilms, mais seulement après avoir déshydraté l'échantillon, ce qui produit des artefacts indésirables et déforme l'échantillon. In addition to these approaches, it is possible to follow water currents through the shapes (such as cones and mushrooms) of biofilms, using video of the movement of fluorescently coated beads (Figure (PageIndex<15>)).

Figure (PageIndex<14>): A biofilm forms when planktonic (free-floating) bacteria of one or more species adhere to a surface, produce slime, and form a colony. (credit: Public Library of Science). Figure (PageIndex<15>): In this image, multiple species of bacteria grow in a biofilm on stainless steel (stained with DAPI for epifluorescence miscroscopy). (credit: Ricardo Murga, Rodney Donlan).


Pure manganese(III) 5,10,15,20-tetrakis(4-benzoic acid)porphyrin (MnTBAP) is not a superoxide dismutase mimic in aqueous systems: a case of structure–activity relationship as a watchdog mechanism in experimental therapeutics and biology

Superoxide is involved in a plethora of pathological and physiological processes via oxidative stress and/or signal transduction pathways. Superoxide dismutase (SOD) mimics have, thus, been actively sought for clinical and mechanistic purposes. Manganese(III) 5,10,15,20-tetrakis(4-benzoic acid)porphyrin (MnTBAP) is one of the most intensely explored “SOD mimics” in biology and medicine. However, we show here that this claimed SOD activity of MnTBAP in aqueous media is not corroborated by comprehensive structure–activity relationship studies for a wide set of Mn porphyrins and that MnTBAP from usual commercial sources contains different amounts of noninnocent trace impurities (Mn clusters), which inhibited xanthine oxidase and had SOD activity in their own right. In addition, the preparation and thorough characterization of a high-purity MnTBAP is presented for the first time and confirmed that pure MnTBAP has no SOD activity in aqueous medium. These findings call for an assessment of the relevance and suitability of using MnTBAP (or its impurities) as a mechanistic probe and antioxidant therapeutic conclusions on the physiological and pathological role of superoxide derived from studies using MnTBAP of uncertain purity should be examined judiciously. An unequivocal distinction between the biological effects due to MnTBAP and that of its impurities can only be unambiguously made if a pure sample is/was used. This work also illustrates the contribution of fundamental structure–activity relationship studies not only for drug design and optimization, but also as a “watchdog” mechanism for checking/spotting eventual incongruence of drug activity in chemical and biological settings.

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