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Hemiptera sp preimago?

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De quelle espèce d'Hémiptère est ce preimago, vu en 2015 à Rome ?


Je pense que c'est un puceron car il a de longues pattes fines et des tarses à deux articulations et deux griffes et ressemble beaucoup au puceron russe du blé. Ils sont très communs en zone tempérée et constituent un important ravageur des plantes.

Voici à quoi ressemble le puceron russe du blé :

Source : Site Web du gouvernement de Tasmanie


Démêler la taxonomie de Belostome Latreille (Hemiptera, Heteroptera, Belostomatidae) à l'aide d'approches de codes-barres ADN

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Résumé

Belostome est le genre le plus diversifié de Belostomatidae, comprenant 74 espèces. Le petit Belostome Les espèces sont difficiles à identifier principalement en raison de la présence d'espèces cryptiques. Comme le codage à barres de l'ADN a été un outil crucial pour résoudre l'obstacle taxonomique associé à de nombreux taxons, nous avons comparé les délimitations d'espèces obtenues par des approches morphologiques et moléculaires, afin d'aider à démêler la taxonomie de Belostome. Nous avons échantillonné 192 spécimens de Belostome à travers la plaine côtière brésilienne du Rio Grande do Sul. Les échantillons ont d'abord été identifiés à l'aide de marqueurs morphologiques, puis caractérisés pour deux marqueurs mitochondriaux : la sous-unité I (COI) de la cytochrome C oxydase et les gènes de l'ARNr 16S, générant respectivement 181 et 164 séquences. Ceux-ci ont été complétés par Belostome séquences téléchargées depuis NCBI/BOLD (101 pour COI & 13 pour 16S). Ainsi, des matrices comprenant 282, 177 et 299 séquences pour COI, 16S et l'ensemble de données concaténées, respectivement, ont été analysées par des approches phylogénétiques, phylogéographiques et à distance. L'évaluation morphologique initiale a permis l'identification de 14 morphotypes d'organes génitaux mâles, dont les séquences ont été ajoutées à une matrice préliminaire contenant les séquences NCBI/BOLD de cinq autres espèces décrites, nous permettant de récupérer 10 clades dans les analyses moléculaires. Des modèles de monophylie réciproque ont été confirmés pour seulement six des espèces étudiées : Belostoma angustum, Belostoma cummingsi, Belostoma dentatum, Belostoma noualhieri, Belostoma orbiculatum et Bélostomie ribeiroi. Belostoma candidum, Belostoma horvathi et Belostoma sanctulum apparut mêlé en un seul clade. Le regroupement de ceux-ci avec les cinq autres morphotypes distincts (génitaux masculins) révèle un clade avec des niveaux élevés de polymorphisme morphologique ou de plasticité phénotypique.

Graphique S1. Arbre phylogénétique généré par analyse bayésienne d'un fragment de 650 pb du gène COI. Les tailles des branches sont proportionnelles à l'échelle donnée en substitutions par nucléotide. Les nombres sur les branches internes se réfèrent à la probabilité postérieure de chaque clade. Les couleurs des branches renvoient à la composition de chacun des clades, tandis que les symboles à droite renvoient aux différents points de collecte.

Graphique S2. Arbre phylogénétique généré par analyse bayésienne d'un fragment de 302 pb du gène 16S. Les tailles des branches sont proportionnelles à l'échelle donnée en substitutions par nucléotide. Les nombres sur les branches internes se réfèrent à la probabilité postérieure de chaque clade. Les couleurs des branches renvoient à la composition de chacun des clades, tandis que les symboles à droite renvoient aux différents points de collecte.

Graphique S3. Partie en forme d'ampoule et spermathèque des femelles du sous-clade 3 (a), du sous-clade 4 (b), du sous-clade 5 (c) et du sous-clade 6 (d) du clade Yellow (Fig. 2).

Graphique S4. Les organes génitaux des mâles positionnés en travers de la grande polytomie du clade jaune (Fig. 2), et provisoirement identifiés comme Belostome sp. 1 (a), Belostome sp. 2 (b), Belostome sp. 3 (c) B. sanctuaire (aff.) (d).

Graphique S5. Homme identifié comme B. horvathi (aff.) le long du clade jaune (Fig. 2), avec détachement de (a) la carène prosternale et (b) les organes génitaux.

Tableau S1. Nouveau Belostome espèces collectées dans cette étude avec leurs sexes respectifs, points de collecte, coordonnées géographiques et numéros d'accession GenBank.

Tableau S2. Séquences de Belostome et les espèces hors groupe téléchargées depuis GenBank ou BOLD.

Remarque : L'éditeur n'est pas responsable du contenu ou de la fonctionnalité des informations fournies par les auteurs. Toute question (autre que le contenu manquant) doit être adressée à l'auteur correspondant à l'article.


Invasion d'extraterrestre B. tabaci Espèces cryptiques

Avant l'introduction de l'étranger B. tabaci MEAM1 au milieu des années 1990, indigènes B. tabaci a été distribué dans 12 provinces de Chine et a attiré peu d'attention de la part des chercheurs ( Xu 1996). L'apparition occasionnelle de B. tabaci a été documentée dans le sud de la Chine, notamment dans le Guangdong, le Guangxi, Taïwan, le Yunnan, Hainan et Shanghai ( Luo et al. 1989, Cai et al. 1995). La dynamique des populations et/ou les dommages causés par B. tabaci dans les champs de coton ont été documentés à Taïwan, Yunnan, Hainan et Shanghai ( Luo et al. 1989). Par exemple, à Shanghai entre 1977 et 1984, B. tabaci pourrait être détectée dans les champs de coton au début de juillet et pourrait réapparaître en août et septembre ( Luo et al. 1989). Parmi les virus végétaux transmis par B. tabaci, Virus de l'enroulement des feuilles de la tomate (TomLCV) a été le premier détecté dans le Guangdong et le Guangxi ( Cai et al. 1995).

L'augmentation des dommages causés par B. tabaci a été observé à Shanghai entre 1994 et 1996, ce qui pourrait être lié à l'introduction et à la propagation du poinsettia ornemental, Euphorbia pulcherrima, en 1994 ( Chen 1997). De même, les dommages croissants causés par B. tabaci sur le terrain à Guangzhou, le Guangdong a commencé à attirer beaucoup d'attention à partir de 1996 ( Bao 1999). En 2000, des foyers de B. tabaci s'est produite dans plusieurs régions de Chine ( Zhang 2000). Cinq B. tabaci les populations collectées dans le Guangdong, le Shanxi, le Xinjiang et Pékin entre 1999 et 2000 ont été identifiées comme MEAM1 sur la base du gène mitochondrial de la cytochrome oxydase I (mtCOI) ( Luo et al. 2002), confirmant que les épidémies généralisées de B. tabaci ont été étroitement associés à l'introduction de MEAM1.

Initialement, les termes descriptifs faisant référence à un « biotype », « biotype non-B » ou « sous-groupe génétique » spécifique ont été utilisés pour caractériser les populations indigènes. B. tabaci en Chine ( Dinsdale et al. (2010)). Depuis 2010, les termes descriptifs se référant à une « espèce » spécifique, « espèce cryptique » ou « espèce putative » ont été utilisés pour caractériser les espèces cryptiques indigènes remplaçant le terme de « biotype » ( Dinsdale et al. (2010)).

En 2003, un autre aleurode extraterrestre, MED, a été découvert pour la première fois dans le Yunnan lors d'une enquête sur B. tabaci espèces cryptiques dans 11 provinces ( Chu et al. 2006). Entre 1994 et 2003, MEAM1 a été identifié dans 23 provinces et MED dans 3 provinces (Fig. 1a). Entre 2004 et 2007, MEAM1 a été enregistré dans 28 provinces et MED dans 27 provinces (Fig. 1b). Entre 2008 et 2017, MEAM1 a été enregistré dans 26 provinces et MED dans 30 provinces (Fig. 1c). Ces données ont montré que la propagation des deux espèces exotiques B. tabaci espèces cryptiques était très rapide.

Distribution de Bemisia tabaci espèces cryptiques en Chine pendant (a) 1994-2003, (b) 2004-2007 et (c) 2008-2017.

Distribution de Bemisia tabaci espèces cryptiques en Chine pendant (a) 1994-2003, (b) 2004-2007 et (c) 2008-2017.


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Classification

Taxons associés

Pour citer cette page : Myers, P., R. Espinosa, C. S. Parr, T. Jones, G. S. Hammond et T. A. Dewey. 2021. Le Web de la diversité animale (en ligne). Consulté sur https://animaldiversity.org.

Clause de non-responsabilité: Le Web sur la diversité animale est une ressource éducative écrit en grande partie par et pour les étudiants. ADW ne couvre pas toutes les espèces dans le monde et n'inclut pas non plus toutes les dernières informations scientifiques sur les organismes que nous décrivons. Bien que nous modifiions nos comptes pour en assurer l'exactitude, nous ne pouvons garantir toutes les informations contenues dans ces comptes. Bien que le personnel et les contributeurs d'ADW fournissent des références à des livres et à des sites Web que nous jugeons dignes de confiance, nous ne pouvons pas nécessairement approuver le contenu de références indépendantes de notre volonté.

Ce matériel est basé sur des travaux soutenus par la National Science Foundation Grants DRL 0089283, DRL 0628151, DUE 0633095, DRL 0918590 et DUE 1122742. Un soutien supplémentaire est venu de la Fondation Marisla, UM College of Literature, Science, and the Arts, Museum de zoologie et des services d'information et de technologie.


Contenu

Les cochenilles varient considérablement en apparence, allant de très petits organismes (1 à 2 mm) qui poussent sous des couvertures de cire (certains en forme d'huîtres, d'autres comme des coquilles de moules), à des objets brillants ressemblant à des perles (environ 5 mm), à des animaux recouverts de cire farineuse. Les femelles adultes sont presque toujours immobiles (à l'exception des cochenilles) et attachées en permanence à la plante dont elles se nourrissent. Ils sécrètent une couche cireuse pour se défendre, les faisant ressembler à des écailles de reptiles ou de poissons, et leur donnant leur nom commun. [2]

Le groupe est composé de cochenilles femelles extrêmement dimorphes sexuellement, ce qui est inhabituel pour les hémiptères, conserve la morphologie externe immature même lorsqu'elle est sexuellement mature, une condition connue sous le nom de néoténie. Les femelles adultes sont en forme de poire, elliptiques ou circulaires, sans ailes, et généralement aucune constriction séparant la tête du corps. La segmentation du corps est indistincte, mais peut être indiquée par la présence de soies marginales. Les pattes sont absentes chez les femelles de certaines familles, et lorsqu'elles sont présentes, elles varient de talons à segment unique à des membres à cinq segments. Les cochenilles femelles n'ont pas d'yeux composés, mais des ocelles (yeux simples) sont parfois présents chez les Margarodidae, les Ortheziidae et les Phenacolachiidae. La famille Beesoniidae manque d'antennes, mais d'autres familles possèdent des antennes avec de un à treize segments. Les pièces buccales sont adaptées pour percer et sucer. [2]

Les mâles adultes, en revanche, ont la tête, le thorax et l'abdomen typiques d'autres groupes d'insectes et sont si différents des femelles qu'il est difficile de les coupler en tant qu'espèce. Ce sont généralement des insectes élancés ressemblant à des pucerons ou à de petites mouches. Ils ont des antennes à neuf ou dix segments, des yeux composés (Margarodidae et Ortheziidae) ou des yeux simples (la plupart des autres familles) et des pattes à cinq segments. La plupart des espèces ont des ailes et, pour certaines, les générations alternées peuvent être ailées ou aptères. Les mâles adultes ne se nourrissent pas et meurent dans les deux ou trois jours suivant l'émergence. [2]

Chez les espèces à mâles ailés, seules les ailes antérieures sont généralement pleinement fonctionnelles. Ceci est inhabituel chez les insectes, cela ressemble le plus à la situation des vraies mouches, les diptères. Cependant, les Diptères et les Hémiptères ne sont pas étroitement liés, et ne se ressemblent pas étroitement en morphologie par exemple, les filaments de la queue des Coccoidea ne ressemblent à rien dans la morphologie des mouches. Les ailes postérieures (métthoraciques) sont réduites, généralement au point qu'elles peuvent facilement être négligées. Chez certaines espèces, les ailes postérieures ont des hamuli, des crochets, qui relient les ailes postérieures aux ailes principales, comme chez les hyménoptères. Les ailes vestigiales sont souvent réduites à des pseudo-haltères, des appendices en forme de massue, mais ceux-ci ne sont pas homologues aux organes de contrôle des diptères, et il n'est pas clair s'ils ont une fonction de contrôle substantielle. [3]

L'hermaphrodisme est très rare chez les insectes, mais plusieurs espèces de Icerya présenter une forme inhabituelle. L'adulte possède un ovotestis, composé à la fois de tissus reproducteurs féminins et masculins, et le sperme est transmis aux jeunes pour leur utilisation future. Le fait qu'une nouvelle population puisse être fondée par un seul individu peut avoir contribué au succès de la cochenille cotonneuse qui s'est répandue dans le monde entier. [4]

Les cochenilles femelles des familles plus avancées se développent à partir de l'œuf jusqu'à un stade de premier stade (rampe) et un stade de deuxième stade avant de devenir adulte. Dans les familles plus primitives, il existe un stade larvaire supplémentaire. Les mâles passent par un premier et un deuxième stade larvaire, un stade prépupal et un stade pupal avant l'âge adulte. [2]

Les premiers stades de la plupart des espèces de cochenilles émergent de l'œuf avec des pattes fonctionnelles et sont officieusement appelés « chenilles ». Ils rampent immédiatement à la recherche d'un endroit approprié pour s'installer et se nourrir. Chez certaines espèces, ils tardent à s'installer soit jusqu'à ce qu'ils meurent de faim, soit jusqu'à ce qu'ils aient été emportés par le vent sur ce qui est vraisemblablement une autre plante, où ils peuvent établir une nouvelle colonie. Il existe de nombreuses variantes sur ces thèmes, telles que les cochenilles associées à des espèces de fourmis qui agissent comme bergers et transportent les jeunes vers des sites protégés pour se nourrir. Dans les deux cas, beaucoup de ces espèces de chenilles, lorsqu'elles muent, perdent l'usage de leurs pattes s'il s'agit de femelles et restent sur place toute leur vie. Seuls les mâles conservent des pattes, et chez certaines espèces des ailes, et les utilisent pour rechercher des femelles. Pour ce faire, ils marchent généralement, car leur capacité à voler est limitée, mais ils peuvent être transportés vers de nouveaux endroits par le vent. [2]

Les femelles adultes des familles Margarodidae, Ortheziidae et Pseudococcidae sont mobiles et peuvent se déplacer vers d'autres parties de la plante hôte ou même des plantes voisines, mais la période mobile est limitée à une courte période entre les mues. Certains d'entre eux hivernent dans les crevasses de l'écorce ou parmi la litière végétale, se déplaçant au printemps vers une jeune pousse tendre. Cependant, la majorité des cochenilles femelles sont sédentaires à l'âge adulte. Leur capacité de dispersion dépend de la distance à laquelle un robot peut ramper avant d'avoir besoin de se débarrasser de sa peau et de commencer à se nourrir. Il existe différentes stratégies pour lutter contre les feuillus. Sur ceux-ci, les mâles se nourrissent souvent des feuilles, généralement à côté des nervures, tandis que les femelles sélectionnent les rameaux. Lorsqu'il y a plusieurs générations dans l'année, il peut y avoir un recul général sur les rameaux à l'approche de l'automne. Sur les branches, le dessous est généralement préféré comme protection contre la prédation et les intempéries. La cochenille solenopsis se nourrit du feuillage de son hôte en été et des racines en hiver, et un grand nombre d'espèces de cochenilles se nourrissent de racines de manière invisible, toute l'année. [2]

Reproduction et génétique de la détermination du sexe Modifier

Les cochenilles présentent un très large éventail de variations dans la génétique de la détermination du sexe et les modes de reproduction. Outre la reproduction sexuée, un certain nombre de formes différentes de systèmes reproducteurs sont utilisées, y compris la reproduction asexuée par parthénogenèse. Chez certaines espèces, les populations sexuées et asexuées se trouvent à différents endroits, et en général, les espèces avec une large aire de répartition géographique et une diversité de plantes hôtes sont plus susceptibles d'être asexuées. La grande taille de la population est supposée protéger une population asexuée de l'extinction, mais néanmoins, la parthénogenèse est rare chez les cochenilles, les mangeurs généralistes les plus répandus se reproduisant sexuellement, la majorité d'entre eux étant des espèces nuisibles. [5]

De nombreuses espèces ont le système XX-XO où la femelle est diploïde et homogamétique tandis que le mâle est hétérogamétique et manque d'un chromosome sexuel. Chez certains Diaspididae et Pseudococcidae, les deux sexes sont produits à partir d'œufs fécondés mais au cours du développement, les mâles éliminent le génome paternel et ce système appelé élimination du génome paternel (PGE) se retrouve dans près de 14 familles de cochenilles. Cette élimination est réalisée avec plusieurs variantes. Le plus courant (appelé système lécanoïde) impliquait la désactivation du génome paternel et l'élimination au moment de la production de spermatozoïdes chez les mâles, cela se voit chez les Pseudococcidae, Kerriidae et certains Eriococcidae. Dans l'autre variante ou Comstockiella système, les cellules somatiques ont le génome paternel intact. Une troisième variante trouvée chez les Diaspididae implique que le génome paternel soit complètement supprimé à un stade précoce rendant les mâles haploïdes à la fois dans les cellules somatiques et germinales même s'ils sont formés à partir de diploïdes, c'est-à-dire à partir d'œufs fécondés. En plus de cela, il existe également une véritable haplodiploïdie avec les femelles nées d'œufs fécondés et les mâles d'œufs non fécondés. Cela se voit dans le genre Icerya. Dans Parthénolécanium, les mâles naissent d'œufs non fécondés, mais la diploïdie est brièvement restaurée par fusion de noyaux de clivage haploïdes, puis un chromosome sexuel est perdu par hétérochromatinisation. Les femelles peuvent se reproduire par parthénogénétique avec six variantes différentes selon que les mâles sont totalement absents ou non (parthénogenèse obligatoire vs facultative), le sexe des œufs fécondés vs non fécondés et selon la façon dont la diploïdie est restaurée dans les œufs non fécondés. On pense que l'évolution de ces systèmes est le résultat d'un conflit intra-génomique ainsi que d'un conflit éventuellement inter-génomique avec des endosymbiotes sous diverses pressions de sélection. La diversité des systèmes a fait des cochenilles des modèles idéaux pour la recherche. [6]

Les cochenilles sont un groupe ancien, originaire du Crétacé, période au cours de laquelle les angiospermes ont dominé les plantes, avec seulement quelques groupes d'espèces trouvés sur les gymnospermes. Ils se nourrissent d'une grande variété de plantes mais sont incapables de survivre longtemps loin de leurs hôtes. Alors que certains se spécialisent sur une seule espèce végétale (monophage), et certains sur un seul genre ou famille végétale (oligophage), d'autres sont moins spécialisés et se nourrissent de plusieurs groupes de plantes (polyphages). [2] Le parasitologue Robert Poulin note que le comportement alimentaire des cochenilles ressemble beaucoup à celui des ectoparasites, vivant à l'extérieur de leur hôte et se nourrissant uniquement d'eux, même s'ils n'ont pas été traditionnellement ainsi décrits à ses yeux, ces espèces qui restent immobiles sur un seul hôte et se nourrissent uniquement de lui se comportent comme des ectoparasites obligatoires. [7] Par exemple, les espèces de cochenilles sont restreintes aux hôtes cactus, et les espèces induisant des galles Apiomorpha sont limités à Eucalyptus. Certaines espèces ont certaines exigences en matière d'habitat, certains Ortheziidae se trouvent dans les prairies humides, parmi les mousses et dans le sol des bois, et l'échelle de l'enseigne boréale (Newsteadia flocosa) habite la litière végétale. [2] Une cochenille hawaïenne Clavicoccus erinaceus qui se nourrissait uniquement des espèces désormais en danger critique d'extinction Abutilon sandwicense a disparu comme une autre espèce Phyllococcus oahuensis. [8] Plusieurs autres cochenilles monophages, en particulier celles des îles, sont menacées de coextinction en raison des menaces auxquelles sont confrontées leurs plantes hôtes. [9]

La plupart des cochenilles sont des herbivores, se nourrissant de la sève du phloème tirée directement du système vasculaire de la plante, mais quelques espèces se nourrissent de tapis fongiques et de champignons, comme certaines espèces du genre Newsteadia dans la famille des Ortheziidae. La sève des plantes fournit une alimentation liquide riche en sucre et en acides aminés non essentiels. Pour pallier le manque d'acides aminés essentiels, ils dépendent de protéobactéries endosymbiotiques. [10] Les cochenilles sécrètent une grande quantité de liquide visqueux collant connu sous le nom de "mielleux". Cela comprend les sucres, les acides aminés et les minéraux, et est attrayant pour les fourmis tout en agissant comme un substrat sur lequel la moisissure fuligineuse peut se développer. La moisissure peut réduire la photosynthèse des feuilles et nuit à l'apparence des plantes ornementales. Les activités de la cochenille peuvent entraîner un stress pour la plante, entraînant une croissance réduite et lui conférant une plus grande sensibilité aux maladies des plantes. [11]

Cochenille du genre Cryptostigma vivent à l'intérieur des nids d'espèces de fourmis néotropicales. [12] De nombreuses plantes tropicales ont besoin de fourmis pour survivre qui à leur tour cultivent des cochenilles formant ainsi une symbiose à trois voies. [13] Certaines fourmis et cochenilles ont une relation mutualiste, les fourmis se nourrissent du miellat et protègent en retour les écailles. Sur un tulipier, des fourmis ont été observées en train de construire une tente de papier sur les écailles. Dans d'autres cas, les cochenilles sont transportées à l'intérieur du nid de la fourmi la fourmi Acropyga exsanguis pousse cela à l'extrême en transportant une cochenille femelle fécondée avec elle lors de son vol nuptial, afin que le nid qu'elle fonde puisse être approvisionné. [2] Cela permet à la cochenille farineuse d'être largement dispersée. Espèces de Hippéocoque ont de longues jambes s'accrochant avec des griffes pour saisir le Dolichoderus fourmis qui les soignent, elles se laissent transporter dans la fourmilière. Ici, les cochenilles sont à l'abri de la prédation et des risques environnementaux, tandis que les fourmis ont une source de nourriture. [2] Une autre espèce de fourmi maintient un troupeau de cochenilles à l'intérieur des tiges creuses d'un Bartéria arbre les cochenilles se nourrissent de la sève et les fourmis, tout en profitant du miellat, chassent les autres insectes herbivores de l'arbre tout en empêchant les vignes de l'étouffer. [14]

Les cochenilles ont divers ennemis naturels, et la recherche dans ce domaine est en grande partie dirigée vers les espèces qui sont des ravageurs des cultures. Les champignons entomopathogènes peuvent attaquer les écailles appropriées et les envahir complètement. L'identité de l'hôte n'est pas toujours apparente car de nombreux champignons sont spécifiques à l'hôte et peuvent détruire toutes les écailles d'une espèce présente sur une feuille sans affecter une autre espèce. [15] Champignons du genre Septobasidium ont une relation mutualiste plus complexe avec les cochenilles. Le champignon vit sur les arbres où il forme un tapis qui envahit les écailles, réduisant la croissance des écailles parasitées individuelles et les rendant parfois stériles, mais protégeant la colonie d'écailles des conditions environnementales et des prédateurs. Le champignon en profite en métabolisant la sève extraite de l'arbre par les insectes. [16]

Les ennemis naturels comprennent les guêpes parasitoïdes, principalement des familles Encyrtidae et Eulophidae, et les coléoptères prédateurs tels que les charançons des champignons, les coccinelles et les coléoptères. [2] Les coccinelles se nourrissent de pucerons et de cochenilles, pondant leurs œufs près de leurs proies pour s'assurer que leurs larves ont un accès immédiat à la nourriture. La coccinelle Cryptolaemus montrouzieri est connu comme le « destructeur de cochenilles » parce que les adultes et les larves se nourrissent de cochenilles et de quelques écailles molles. [17] Les fourmis qui s'occupent de leurs fournisseurs de miellat ont tendance à chasser les prédateurs, mais le destructeur de cochenilles a déjoué les fourmis en développant un camouflage cryptique, avec leurs larves imitant les larves d'écailles. [2]

En tant que nuisibles Modifier

De nombreuses espèces de cochenilles sont de sérieux ravageurs des cultures. [18] En 1990, ils ont causé environ 5 milliards de dollars de dégâts aux cultures aux États-Unis. [19] Le revêtement cireux de nombreuses espèces de cochenilles protège efficacement leurs adultes des insecticides de contact, qui ne sont efficaces que contre le stade larvaire du premier stade connu sous le nom de robot d'exploration. Cependant, les écailles peuvent souvent être contrôlées à l'aide d'huiles horticoles qui les étouffent, de pesticides systémiques qui empoisonnent la sève des plantes hôtes, ou par des agents de lutte biologique tels que de minuscules guêpes et coccinelles parasitoïdes. Le savon insecticide peut également être utilisé contre les écailles. [20]

Une espèce, l'écaille cotonneuse, est un ravageur commercial sérieux sur 65 familles de plantes ligneuses, y compris Agrumes des fruits. Il s'est répandu dans le monde entier depuis l'Australie. [21] [22]

Écaille de coussin cotonneux femelle adulte (Icerya achat) avec de jeunes chenilles. L'espèce est un important ravageur commercial des cultures telles que Agrumes des fruits.


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T1 - Evolution des cicadelles (Insecta

T2 - Hémiptères : Fulgoroidea)

N1 - Informations sur le financement : Nous remercions les personnes suivantes pour leur aide précieuse dans le travail sur le terrain et la collecte de spécimens : T. McCabe, C. Bartlett, M. Adams, K. Miller, G. Svenson, T. Kondo, G. Morse, H. Romack, R. Colwell, J. Longino et C. Godoy. Nous remercions les personnes suivantes pour leurs généreux prêts de spécimens : G. Bellis, J. Cooley, T. Erwin, K. Hill, D. Marshall, S. McKamey, B. Moulds, M. Moulds, L. O'Brien, C. Simon , M. Wilson, I. Winkler et M. Whiting. Pour l'aide à l'identification des spécimens, nous remercions C. Bartlett, J. Constant, M. Fletcher et L. O'Brien. Charles Bartlett a fourni des suggestions et des commentaires utiles sur le manuscrit, menant à de nombreuses améliorations. Ce matériel est basé sur des travaux soutenus par la National Science Foundation sous les numéros de subvention DEB-0342538 et DEB-0529679, et par le New York State Museum. Toutes les opinions, découvertes et conclusions ou recommandations exprimées dans ce document sont celles des auteurs et ne reflètent pas nécessairement les vues de la National Science Foundation ou du New York State Museum.

N2 - La superfamille des cicadelles Fulgoroidea (Insecta: Hemiptera) comprend environ 20 familles d'insectes décrites, selon la classification suivie. De multiples hypothèses concurrentes de la phylogénie des fulgoroïdes ont été publiées, basées soit sur le codage des caractères morphologiques soit sur des données de séquence d'ADN, cependant, ces hypothèses sont en désaccord sur plusieurs aspects clés concernant l'évolution des cicadelles. Le présent article cherche à tester ces hypothèses, y compris l'Asche (Asche, M. 1987. Réflexions préliminaires sur la phylogénie de Fulgoromorpha (Homoptera Auchenorrhyncha). Dans : Actes de la 6e réunion d'Auchenorrhyncha, Turin, Italie, 7-11 septembre 1987 , pp. 47-53.) hypothèse d'une tendance de la structure des ovipositeurs, qui pourrait être corrélée à l'écologie alimentaire des cicadelles. Les reconstructions phylogénétiques de Fulgoroidea sont présentées ici sur la base de l'analyse des données de séquences nucléotidiques de l'ADN de quatre loci (ADNr 18S, ADNr 28S, Histone 3 et Wingless) séquencés à partir de 83 taxons exemplaires représentant 18 familles et groupes externes de cicadelles. Les ensembles de données ont été analysés séparément et dans diverses combinaisons sous le critère de parcimonie maximale, et l'ensemble de données combiné total a été analysé à la fois via la parcimonie maximale et les critères bayésiens partitionnés. Les résultats des analyses combinées étaient concordants entre les paradigmes de reconstruction. Les relations retrouvées suggèrent plusieurs lignées majeures de cicadelles, notamment : (1) Delphacidae + Cixiidae (2) Kinnaridae + Meenoplidae (3) Fulgoridae + Dictyopharidae (4) Lophopidae + Eurybrachidae (éventuellement + Flatidae) (5) Ricaniidae + Caliscelidae (éventuellement + Tropiduchidae) . Les résultats suggèrent également le placement des Achilixiidae en dehors des Cixiidae et des Tettigometridae comme l'une des lignées les plus récemment diversifiées au sein de Fulgoroidea. La phylogénie résultante soutient l'hypothèse d'Asche (1987) d'une tendance fonctionnelle de la structure des ovipositeurs à travers les familles.

AB - La superfamille des cicadelles Fulgoroidea (Insecta : Hemiptera) comprend environ 20 familles d'insectes décrites, selon la classification suivie. De multiples hypothèses concurrentes de la phylogénie des fulgoroïdes ont été publiées, basées soit sur le codage des caractères morphologiques soit sur des données de séquence d'ADN, cependant, ces hypothèses sont en désaccord sur plusieurs aspects clés concernant l'évolution des cicadelles. Le présent article cherche à tester ces hypothèses, y compris l'Asche (Asche, M. 1987. Réflexions préliminaires sur la phylogénie de Fulgoromorpha (Homoptera Auchenorrhyncha). In: Proceedings of the 6th Auchenorrhyncha Meeting, Turin, Italy, 7-11 September, 1987 , pp. 47-53.) hypothèse d'une tendance dans la structure des ovipositeurs, qui pourrait être corrélée à l'écologie alimentaire des cicadelles. Les reconstructions phylogénétiques de Fulgoroidea sont présentées ici sur la base de l'analyse des données de séquences nucléotidiques de l'ADN de quatre loci (ADNr 18S, ADNr 28S, Histone 3 et Wingless) séquencés à partir de 83 taxons exemplaires représentant 18 familles et groupes externes de cicadelles. Les ensembles de données ont été analysés séparément et dans diverses combinaisons sous le critère de parcimonie maximale, et l'ensemble de données combiné total a été analysé à la fois via la parcimonie maximale et les critères bayésiens partitionnés. Les résultats des analyses combinées étaient concordants entre les paradigmes de reconstruction. Les relations retrouvées suggèrent plusieurs lignées majeures de cicadelles, notamment : (1) Delphacidae + Cixiidae (2) Kinnaridae + Meenoplidae (3) Fulgoridae + Dictyopharidae (4) Lophopidae + Eurybrachidae (éventuellement + Flatidae) (5) Ricaniidae + Caliscelidae (éventuellement + Tropiduchidae) . Les résultats suggèrent également le placement des Achilixiidae en dehors des Cixiidae et des Tettigometridae comme l'une des lignées les plus récemment diversifiées au sein de Fulgoroidea. La phylogénie résultante soutient l'hypothèse d'Asche (1987) d'une tendance fonctionnelle de la structure des ovipositeurs à travers les familles.


Voir également:

Photos annotées de Central Texas Membracidae (9 genres) - Austin Bug Collection

A Checklist of the Membracidae of Florida (26 genres, 64 spp.) - Rothschild, M. J. 2012. (Remarque : les images peuvent être agrandies)

Guide des Membracidés d'Amérique du Nord - BugGuide

Treehoppers : Aetalionidae, Melizoderidae et Membracidae (Hemiptera) - Deitz, L. L. et M. S. Wallace (chefs d'équipe). 2010.

Liste de contrôle des Membracidae de l'Oklahoma (30 genres, 84 spp.) - OK State University

Biologia Centrali-Americana : Insecta, Hémiptères-Homoptera - Fowler, W. W. 1894-1896. Onglets 1-10.


Remerciements

Cette étude a été en partie financée par le World Top Discipline Program of Guizhou Province: Karst Ecoenvironment Sciences (No.125 2019 Qianjiao Keyan Fa), la Guizhou Provincial Science and Technology Foundation ([2018]1411), le Natural Science Research Project (Innovation Group ) du ministère de l'Éducation de la province du Guizhou ([2021]013), le projet de soutien scientifique et technologique du Guizhou ([2019]2855), le projet scientifique et technologique de la ville de Guiyang ([2020]7-18), le programme de formation pour les -level Innovative Talents of Guizhou Province ([2016]4020) et le projet de construction régionale de la discipline supérieure de la province du Guizhou: Ecology in Guiyang University [Qian Jiao Keyan Fa [2017]85].


Coccinelle bleu acier - Halmus chalybeus


Coccinelle bleu acier adulte, Halmus chalybeus (Coléoptères : Coccinellidae), environ 4 mm de long. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Larve mature de coccinelle bleu acier, Halmus chalybeus (Coléoptères : Coccinellidae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research

Noms communs

Synonymes

Coccinelle chalybea Boisduval, 1835
Orcus chalybeus (Boisduval, 1835)
Chilocorus cyaneus MacLeay

Biostatut et distribution

Cette adventif la coccinelle d'Australie a été relâchée pour la première fois en Nouvelle-Zélande en 1899. C'est aujourd'hui la coccinelle la plus commune d'Auckland, répandue dans l'île du Nord et présente dans le nord de l'île du Sud. On le trouve sur les arbres et les arbustes dans les habitats indigènes et dans les cultures, les parcs et les jardins, où il se nourrit d'une grande variété d'insectes et d'acariens.

État de conservation: Cette coccinelle adventive est répandue dans l'île du Nord et présente dans le nord de l'île du Sud. Il aide à contrôler certains parasites des plantes économiques et ornementales, mais se nourrit également d'invertébrés indigènes dans les habitats indigènes.

Étapes de la vie et cycle annuel

Le distinctement coloré adultes mesurent environ quatre millimètres de long. La tête, le prothorax (première partie du milieu du corps) et les élytres (couvertures des ailes) sont bleu métallique foncé brillant ou vert. Le devant de la tête, les coins antérieurs du prothorax et le fémur des pattes antérieures sont brun jaunâtre chez les mâles. Les pattes sont sombres sauf que les pieds sont brun moyen comme les antennes. Sous les élytres se trouve une paire d'ailes utilisées pour voler. La petite tête a une paire d'yeux composés et deux antennes courtes.

Les coccinelles femelles pondent en jaune des œufs probablement près des infestations de proies. Certains œufs ont une matière sombre sur le dessus. Un long gris pâle larve éclos de chaque œuf. La larve nouvellement éclose a de longues scolies foncées (extensions charnues pointues) avec une seule longue soie (cheveux) à l'extrémité. Les larves plus âgées ont une base plus foncée sur les scolies qui portent plusieurs soies foncées. Les trois paires de pattes sont utilisées pour la marche. Les larves utilisent également le bout de l'abdomen pour s'accrocher au substrat sur lequel elles marchent. Au fur et à mesure que la larve grandit, elle mue (change de peau). Il existe quatre stades larvaires (stades). Lorsque le quatrième stade larvaire est pleinement développé, il s'attache à un endroit abrité sur une plante et mue en un pupe. La nymphe pâle reste à l'intérieur de la peau larvaire mue et est elle-même recouverte de poils courts et denses. Adultes éclore des pupes et s'accoupler. La durée de chaque étape de la vie dépend de la température, étant plus courte à des températures plus élevées.

Cycle annuel
The ladybird overwinters (May-September) as adults as individuals or in small clusters (up to 10) in leaf folds and other nooks and crannies above ground in trees and shrubs. Occasionally clusters af many adults may be found. During winter adults are often seen basking in the sun. Eggs have been found in spring and summer while larvae and pupae have been found from late spring to early winter. There are two generations per year in Auckland with new adults appearing in January and second generation adults in March to April.

Walking and flying
Both adult and larval stages of this ladybird have three pairs of legs that can be used for walking. Larvae also use the tip of the abdomen for holding onto the substrate. Adults have wings and can fly.

Alimentation
The adult and larval ladybirds eat a variety of small insects including scale insects, psyllids, whitefly and free living gall mites (Eriophyoidea). The jaws are the primarily structures used for holding and chewing the prey. Legs don’t appear to be used for holding prey.

Adults also feed on nectar in flowers and chew the white gum produced by damaged leaves of Eucalyptus espèce.


Adult steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), about 4 mm long. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Adult steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), folding its wings under the elytra, wing covers. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Front of an adult male steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), showing the yellowish brown head and front corners of the prothorax. © Plant & Food Research
Front of adult female steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), showing the dark coloured head and front corners of the prothorax. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Underside of an adult steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), about 4 mm long. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Eggs of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) with structures on top. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Side view of eggs of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) with structures on top. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Eggs of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) with no structures on top. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Newly hatched larvae of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Small larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Mature larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Front view of larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Underside of larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Rear view of larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). © Plant & Food Research
Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), pupa in larval skin note the wing buds and down covering the pupa. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), pupa in larval skin note the wing buds and down covering the pupa. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), pupal and larval skins. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Three overwintering adults of Steelblue ladybirds, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) on underside of a leaf of a puriri, Vitex lucens (Labiatae). Image: Nicholas A. Martin © Nicholas A. Martin
Overwintering adults of Steelblue ladybirds, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) on underside of a leaf of a karaka leaf, Corynocarpus laevigatus. Image: Nicholas A. Martin © Nicholas A. Martin
Overwintering adults of Steelblue ladybirds, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) in crown of a cabbage tree, Cordyline australis (Asparagaceae). Image: Frances MacDonald © Frances MacDonald

Reconnaissance

Adult steelblue ladybirds are easily recognised by their circular shape and shiny steel blue or green colouring. Males have a yellow brown head and front corners of the prothorax. Larvae are also distinctive with their grey colour and long scoli (pointed fleshy extensions) bearing many setae. The pupae are also easily recognised by being in the skin of the mature larva and by being covered in down.


Front of an adult female steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), showing the dark coloured head and front corners of the prothorax. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Side view of adult male steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), note the pale front corner of the prothorax. © Plant & Food Research
Mature larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), pupa in larval skin note the wing buds and down covering the pupa. Image: Nicholas A. Martin © Nicholas A. Martin

Natural Enemies

In New Zealand the bodies of adult steelblue ladybird have been found in the guts of possums, Trichosurus vulpecula. They are probably also preyed upon by birds, spiders and predatory insects.

The dispersal stage of a mite that is a parasite of scale insects has been found on adult steelblue ladybirds. The mite, Hemisarcoptes coccophagus Meyer, 1962 (Acari: Astigmata: Hemisarcoptidae) uses ladybirds to spread from one scale insect colony to another. One of the nymphal stages of the mite has special adaptation for holding on to adult ladybirds. This process of dispersal is called phoresy.

Table: Natural enemies of Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), from Plant- SyNZ database (3 June 2016). The reliability index shows the quality of evidence for the host association (0-10, 10=high quality).
Nom scientifiqueNom communClassificationEnemy TypeReliability IndexBiostatus
Hemisarcoptes coccophagus Meyer, 1962 (Mite)Acari: Astigmata: Hemisarcoptidaeparasite, phoretic on adult10adventive
Trichosurus vulpecula (Kerr, 1792)Possum (Mammal)Marsupialia: Phalangeridaeomnivore10adventive

Host Plants

Adult steelblue ladybirds also feed on nectar in flowers and chew the white gum produced by damaged leaves of Eucalyptus espèce. They may also feed on the honeydew, the sugary solution produced by sap sucking insects such as psyllids, whitefly and some families of scale insects.

Table: Host plants of the Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) from Plant-SyNZ database (3 June 2016). The reliability score shows the quality of evidence for the host association (1-10, 10=high).
Common Name(s)Nom scientifiqueFamilleReliability IndexBiostatus
Eucalypt, Flowering gum, Gum, StringybarkEucalyptus sp.Myrtaceae7unknown
Broadleaf, Huariki (fruit), Kāpuka, Māihīhi, Pāpāuma, Paraparauma, TapatapaumaGriselinia littoralis RaoulGriseliniaceae10endémique
Coastal five finger, Houmāpara, Houpara, Houparapara, Kokotai, Oho, Parapara, WhauwhauPseudopanax lessonii (DC.) K. KochAraliaceae10endémique

Honeydew Feeding

Steelblue ladybird adults are known to feed on nectar. Many have also been found several times on leaves coated with honeydew of the giant willow aphid and the best explanation is that they were feeding on the honeydew.

Table: Honeydew sources of Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), from Plant-SyNZ database (1 June 2015). The reliability score shows the quality of evidence for the host association (0-10, 10=high quality).
Nom scientifiqueNom communClassificationHoneydew feedingReliability IndexBiostatus
Tuberolachnus salignus (Gmelin, 1790)Giant willow aphidHemiptera: Aphididaeadults on leaves with honeydew9adventive

Prey/Host

Both adults and larvae feed on other insects. They have been recorded feeding on scale insects from four families, Asterolecaniidae, Coccidae, Diaspididae, Eriococcidae, and insects with scale like juvenile stages such as whitefly and psyllids. The have also been recorded feeding on moth eggs and free living gall mites (Eriophyoidea). In New Zealand a larva was seen to catch and eat a thrips larva and a tydaeid mite.

Table: Prey of Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), from Plant-SyNZ database (28 July 2017). The reliability score shows the quality of evidence for the host association (0-10, 10=high quality).
Nom scientifiqueNom communClassification Reliability IndexBiostatus
Acizzia acaciae (Maskell, 1894) Hemiptera: Psyllidae10adventive
Acizzia uncatoides (Ferris & Klyver, 1932)Acacia psyllidHemiptera: Psyllidae10adventive
Asterochiton pittospori Dumbleton, 1957Pittosporum whiteflyHemiptera: Aleyrodidae6endémique
Asterodiaspis variolosa (Ratzeburg, 1870)Golden oak scaleHemiptera: Asterolecaniidae10adventive
Bactericera cockerelli (Sulc, 1909)Tomato potato psyllidHemiptera: Triozidae7adventive
Ceroplastes destructor Newstead, 1917Soft wax scaleHemiptera: Coccidae9adventive
Ceroplastes sinensis Del Guercio, 1900Chinese wax scaleHemiptera: Coccidae9adventive
Ctenarytaina sp. 'Acmena' of Dale 2011 Hemiptera: Psyllidae9adventive
Danaus plexippus (Linné, 1758)MonarqueLepidoptera: Nymphalidae10adventive
Diaspidiotus perniciosus (Comstock, 1881)San Jose scaleHemiptera: Diaspididae10adventive
Epelidochiton piperis (Maskell, 1882)Peppercorn scaleHemiptera: Coccidae10endémique
Eriococcus sp.felted scaleHemiptera: Eriococcidae6unknown
Eriophyoid mites Acari: Prostigmata: 5unknown
Euceraphis betulae (Koch, 1855)European birch aphidHemiptera: Aphididae9adventive
Lepidoptera sp Lepidoptera: 5unknown
Orchamoplatus citri (Takahashi, 1940)Australian citrus whiteflyHemiptera: Aleyrodidae10adventive
Panonychus citri (McGregor, 1916)Citrus red miteAcari: Prostigmata: Tetranychidae10adventive
Paropsis charybdis Stal, 1860Eucalyptus tortoise beetleColeoptera: Chrysomelidae6adventive
Phyllocoptes coprosmae Lamb, 1952Coprosma white erineum miteAcari: Prostigmata: Eriophyidae7endémique
Poliaspis floccosa Henderson, 2011Flocculent flax scaleHemiptera: Diaspididae10endémique
Saissetia oleae (Olivier, 1791)Black scaleHemiptera: Coccidae10adventive
Siphanta acuta (Walker, 1851)Green planthopperHemiptera: Flatidae10adventive
Thripidae sp. Thysanoptera: Thripidae5unknown
Trialeurodes sp. 'squarrosa' of NA Martin 2010 Hemiptera: Aleyrodidae8endémique
Trioza adventicia Tuthill, 1952 Hemiptera: Triozidae10adventive
Trioza vitreoradiata (Maskell, 1879)Pittosporum psyllidHemiptera: Triozidae10endémique
Tydaeidae sp. Acari: Prostigmata: Tydaeidae5unknown

Larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) feeding on flax scale, Poliaspis floccosa (Hemiptera: Diaspididae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Moth eggs fed on by steeblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Eggs on leaflet of kowhai, Sophora sp. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Moth eggs fed on by steeblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Eggs on leaflet of kowhai, Sophora sp. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Larval skin and pupal case of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) on a puriri, Vitex lucens, leaf with pepper corn scale insects Epelidochiton piperis (Hemiptera: Coccidae) larvae were feeding on the scale crawlers. Image: Nicholas A. Martin © Plant & Food Research
Eggs of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) on the underside of a Glossy karamu, Coprosma robusta, leaf with white erineum induced by Coprosma white erineum mitePhyllocoptes coprosmae Acari: Eriophyidae) larvae are known to feed on Eriophyidae mites. Image: Nicholas A. Martin © Plant & Food Research
Newly hatched larvae of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) on the underside of a Glossy karamu, Coprosma robusta, leaf with white erineum induced by Coprosma white erineum mitePhyllocoptes coprosmae Acari: Eriophyidae) larvae are known to feed on Eriophyidae mites. Image: Nicholas A. Martin © Plant & Food Research
Larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) feeding on flocculent flax scale, Poliaspis floccosa (Hemiptera: Diaspididae). Image: Nicholas A. Martin © Nicholas A. Martin

Additional Information

Biological control of pests
Steelblue ladybirds from Australia were released into New Zealand in 1899 to control black scale, Saissetia oleae (Olivier, 1791) (Hemiptera: Coccidae), and 1905 to control gum tree scale, Eriococcus coriaceus Maskell, 1893 (Hemiptera: Eriococcidae). It is established in the warmer parts of New Zealand, but it is not known what effect it has on control of those scale insects which also have other natural enemies.

Steelblue ladybirds feed on a wide variety of small insects, including scale insects, psyllids and moth eggs. Its prey includes native insects as well as adventive species. The ladybird lives in crops, parks and gardens as well as native ecosystems. Its impact on herbivore prey is unknown, but judging by the numbers of ladybird adults and larvae on trees and shrubs, it must be consuming many insects including pests. Lo found strong indications that it can contribute to substantial control of soft wax scale, Ceroplastes destructor Newstead, 1917, and Chinese wax scale, Ceroplastes sinensis Del Guecio, 1900 (Hemiptera: Coccidae) in citrus orchards.

It is unlikely that this ladybird would be deliberately released into New Zealand today. Before a potential biological control agent is given permission to be released considerable information on its biology and prey is now required. The benefits from the proposed release need to outweigh any possible risks. The steelblue ladybird has a broad host range that would pose a risk to native insects and a significant contribution to effective control of a pest would need to be demonstrated.

Diverse habits of 'ladybirds'
Not all ladybirds eat insects some feed on mites. Other species eat plant leaves and are pests especially in some tropical countries, whereas other ladybirds feed on fungi. Un de ceux-là, Illeis galbula (Mulsant, 1850), from Australia, feeds on powdery mildew fungi. In New Zealand it is common on pumpkins and other cucurbits, plants that are commonly infected by powdery mildews. A plant feeding ladybird, hadda beetle (Epilachna vigintioctopunctata (Fabricius, 1775)) has recently established in Auckland. It feeds on plants in the Solanaceae (potato) family.

Information Sources

Lo PL 2000. Species abundance of ladybirds (Coleoptera: Coccinellidae) on citrus orchards in Northland, New Zealand, and a comparison of visual and manual methods of assessment. New Zealand Entomologist 23: 61-65.

Morales CF 1989. Saissetia oleae (Olivier), black scale (Homoptera: Coccidae). In: Cameron PJ, Hill RL, Bain J, Thomas WP ed. A Review of Biological Control of Invertebrate Pests and Weeds in New Zealand 1874-1987. Technical Communication No. 10. Wallingford, Oxon, UK, CAB International. Pp. 237-240.

Slipinski A, Boyd B 2006. Revision of the Australian Coccinellidae (Coccinellidae). Part 6. Tribe Chilocorini. Annales Zoologici (Warszawa) 56(2): 265-304.

Slipinski A, Hastings A, Boyd B 2007. Ladybirds of Australia. www.ento.csiro.au/biology/ladybirds/ladybirds.htm

Valentine EW 1967. A list of the hosts of entomophagous insects of New Zealand. New Zealand Journal of Science 10(4): 1100-1209.

Remerciements

Alan Flynn for information about the biology of the ladybird.

The New Zealand Institute for Plant & Food Research Limited (Plant & Food Research) for permission to use photographs.

Other Images


Larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Plant & Food Research Photographer © Plant & Food Research
Larva of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Plant & Food Research Photographer © Plant & Food Research
Newly hatched larvae of steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae). Image: Tim Holmes © Plant & Food Research
Overwintering adults of Steelblue ladybirds, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae) in crown of a cabbage tree, Cordyline australis (Asparagaceae). Image: Nicholas A. Martin © Nicholas A. Martin
Steelblue ladybird, Halmus chalybeus (Coleoptera: Coccinellidae), pupa in larval skin note the wing buds and down covering the pupa. Image: Tim Holmes © Plant & Food Research

Update History

1 November 2018. NA Martin. Changed symbol used for apostrophes.

1 August 2017. NA Martin. Prey table updated. Photo of feeding larva added.


All Science Journal Classification (ASJC) codes

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  • Vancouver
  • Auteur
  • BIBTEX
  • RIS

In: Zootaxa , Vol. 4941, No. 4, 10.03.2021, p. 569-579.

Résultats de recherche : Contribution à la revue › Article de synthèse › peer-review

T1 - Two new species of Coccomorpha (Hemiptera

T2 - Sternorrhyncha) collected from Japanese silver grass, Miscanthus sinensis (Poaceae) in Okinawa Island, Japan

N1 - Funding Information: The authors are grateful to Dr. Takumasa Kondo, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (AGROSAVIA), Colombia, Dr. Gillian W. Watson, Department of Life Sciences, the Natural History Museum, London, U.K., Prof. Giuseppina Pellizzari, Department of Agronomy, Food, Natural Resources, Animals and the Environment, University of Padova, Italy and Dr Douglass R. Miller, ex-Agricultural Research Service, U.S. Department of Agriculture, Beltsville, Maryland, U.S.A. for helpful critique of earlier versions of this manuscript. The study was financially supported by a grant from the Fujiwara Natural History Foundation, 2019–2021. We would like to thank Editage (www.editage.com) for English language editing. Publisher Copyright: Copyright © 2021 Magnolia Press.

N2 - Two new species of Coccomorpha collected from Japanese silver grass, Miscanthus sinensis Andersson (Poaceae), in Okinawa Island, Japan, are described based on the morphology of adult females: Aspidiella kijimuna sp. nov. (Diaspididae) and Dysmicoccus bunagaya sp. nov. (Pseudococcidae). Aspidiella kijimuna is similar to A. phragmitis (Takahashi, 1931) but differs from it by having relatively well-developed and recognisable third lobes, and median lobes with rounded apices. Dysmicoccus bunagaya is similar to Trionymus okiensis Tanaka, 2018 but differs from it by having more than eight pairs of cerarii. Keys to all the Japanese species of Aspidiella and Dysmicoccus are provided.

AB - Two new species of Coccomorpha collected from Japanese silver grass, Miscanthus sinensis Andersson (Poaceae), in Okinawa Island, Japan, are described based on the morphology of adult females: Aspidiella kijimuna sp. nov. (Diaspididae) and Dysmicoccus bunagaya sp. nov. (Pseudococcidae). Aspidiella kijimuna is similar to A. phragmitis (Takahashi, 1931) but differs from it by having relatively well-developed and recognisable third lobes, and median lobes with rounded apices. Dysmicoccus bunagaya is similar to Trionymus okiensis Tanaka, 2018 but differs from it by having more than eight pairs of cerarii. Keys to all the Japanese species of Aspidiella and Dysmicoccus are provided.